DMEM vs F12 for Cultivated Meat Cell Lines
For cultivated meat R&D teams, I’d screen DMEM, Ham’s F12 and a 1:1 DMEM/F12 mix before choosing a basal medium. None is complete on its own: your cell line, supplements...
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Gibco | SKU:
11039021
Gibco™ DMEM/F-12、HEPES、フェノールレッド無添加
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DMEM/F12で使用された公開された研究は何ですか
Cellag Bioで使用されたコンポーネント DMEM/F12, と
FBSCellag Bio研究の51 の30 で使用
FGF2Cellag Bio研究の51 の23 で使用
InsulinCellag Bio研究の51 の15 で使用
DMEMCellag Bio研究の51 の14 で使用
Gibco™ DMEM、高グルコース
これらの研究でも使用されていますが、現在 <tc>Cellbase</tc>にはありません: Matrigel, Dexamethasone. これらの調達を依頼する →
これらを選ぶ方法
これらはCellag Bio. で発表された研究からのものです。これらの研究が使用したコンポーネントを示しており、これらの正確な製品ではありません。結果はお客様のシステムで異なる場合があります。
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サポート
サポート
購入には、完全な技術文書（CoAs、マニュアル、またはプロトコル）が自動的に提供されます。Gibco からの直接的なアプリケーションサポートが含まれており、成功した実装を保証します。
支払い
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購入注文も受け付けています。チェックアウト時に銀行振込を選択し、注文メモまたはメールでPO番号を提供してください。sales@cellbase.com
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法務
法務
ほとんどの製品には追加の契約は必要ありません。細胞株や特定の生物材料は、各サプライヤーからの初回購入時に材料移転契約（MTA） が必要です。これをデジタルで処理します - 両者が出荷前にオンラインで署名します。同じサプライヤーからのその後の注文は即座に進行します。
Gibco™ DMEM/F-12 (Dulbecco's Modified Eagle Medium/Nutrient Mixture F-12) は、広範囲の哺乳類細胞の成長をサポートするために設計された広く使用されている基礎培地です。この1:1の混合物は、DMEMからの高濃度のグルコース、アミノ酸、ビタミンと、Ham's F-12に含まれる多様な成分を組み合わせています。
この特定の製剤（カタログ番号11039021）は、L-グルタミン、HEPESで修飾されており、フェノールレッドを含んでいません。HEPESの追加により、CO₂インキュベーター外での変動を最小限に抑える強力なpH緩衝が提供され、長時間の観察や操作を必要とするアプリケーションに最適です。フェノールレッドが含まれていないため、pH指示薬が測定に干渉する可能性のあるアッセイや実験に適しています。
cGMP準拠の施設で製造されたGibco™ DMEM/F-12は、タンパク質、脂質、成長因子を含んでいません。各バッチは、無菌性と性能に関する厳格な品質基準を満たすように製造されています。
この培地は、2–8 °Cで保存し、光から保護されている場合、最大12か月間安定しています。常温で出荷され、研究用途およびさらなる製造用途の両方に適しています。
研究用途またはさらなる製造用途のためのものです。診断用途や人や動物への直接投与には使用できません。
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規制遵守ISO 13485, cGMP
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保存期間（月）
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保管温度
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検証状況
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製品滅菌方法
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コールドチェーンクラス
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動物由来成分不使用はい
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バッファーシステム
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化学的に定義はい
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濃度
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凍結禁止はい
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グルコース（mg/L）
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培地カテゴリー
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血清含有量
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キセノフリーはい
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培地形態液体
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L-グルタミンはい
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ピルビン酸ナトリウムはい
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HEPESはい
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温度最大（°C）
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温度最小（°C）
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基礎培地
DMEM/F12 を使用した公開研究
51の 157 Cellag Bio研究で使用されています。
これらの研究では、このコンポーネントが使用されましたが、必ずしもこの正確な製品ではありません。
- iSsus3744: A Genome-Scale Model-Guided Strategy for Rational Media Design for Cultivated Pork
- A Beefy-R culture medium: Replacing albumin with rapeseed protein isolates
- A simple and robust serum-free media for the proliferation of muscle cells
- Non-ammoniagenic proliferation and differentiation media for cultivated adipose tissue
- Simple and effective serum-free medium for sustained expansion of bovine satellite cells for cell cultured meat
Cellag Bio, 培養肉研究の公開データベースからの研究。
Cellag Bioに関する研究記録を英語で開く。
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Scaffold Pore Size Analysis: Equipment Selection Checklist
For cultivated meat R&D teams, I would approve pore analysis equipment only after testing a representative scaffold biomaterial against written acceptance criteria - not its advertised range alone. The first...
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Non-Animal Scaffolds Under Heat and pH Stress
For cultivated meat R&D teams, I assess scaffold stability by retained function - not appearance. Test your formulation through its actual heating, cooling and pH sequence. For adherent culture, check...
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LCA Data for Cultivated Meat Equipment Selection
For cultivated meat bioprocess engineers, I compare equipment impacts per 1 kg of usable finished product - not by rated power. I first compare bioreactor systems for process fit, food...
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Serum-Free Media Design for Myoblast Cell Lines
For myoblast culture teams, I would select a serum-free medium by two outcomes: viable cell expansion and retained myotube-forming capacity. Start with your cell line’s history and measurable acceptance limits...
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使用済み培地副産物の二次発酵
培養肉のR&Dチームにとって、私の基本ルールはシンプルです：接種前にバッチの組成と安全限界に基づいて使用済み培地を受け入れる、条件付けする、または拒否する, ことです - 元の培地レシピではありません。 二次発酵は残留栄養素を異なる生物に供給します。それは直接的な培地の再利用ではありません. Chlorella BDH-1 を用いた実験室作業はパイロットテストをサポートしますが、生産収量や資源節約を確立するものではありません。[1] 私はプロセスを**三つの原料ゲート - 組成、清澄化、滅菌 - **を通じて評価します。その後： ホスト、接種物、給餌モードを適格な原料に合わせます。 混合、酸素移動, 必要に応じた光の供給、排気の封じ込めを確認します。 複数のバッチにわたって収穫、製品品質、保持時間、廃棄物処理を検証します。 製品単位ごとのエネルギー、水、廃棄物を測定し、回収および拒否されたバッチを含めます。 私のリリースルール：<u>発酵の成功だけでは不十分です</u>. 意図された使用の安全性試験、バッチの追跡可能性、および適用される英国の規制経路の確認がまだ必要です。 使用済み培地の二次発酵：原料からリリースまで 原料の試験、調整、滅菌 接種前に、各バッチは3つのゲートを通過する必要があります：組成、明確化、滅菌. 原料の組成と受け入れ限界 使用済み培地の各バッチを、元の培地レシピではなく、意図された食品または飼料の使用に対してテストします。培養肉生産からの使用済み培地については、その使用のためのソース仕様に対してバッチを評価します。[5] 残留アミノ酸、糖類、その他の栄養素を測定します。[1][5] 病原体、ウイルス、カビ、酵母、マイコトキシン、生体アミン、重金属のテストを設定するために、ソースベースのハザード評価を使用します。[5] パラメータ 発酵効果 受け入れ、条件付きまたは拒否...
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安定した遺伝子発現のためのUCOEとcHS4の比較
培養肉のR&Dチーム向けには、初期の発現強度ではなく、測定された発現保持によってUCOEまたはcHS4を選択します。 独立したクローン間で保護されていないコントロールと一致する構造を比較します。4回の継代は初期のスクリーニングをサポートできますが、長期的な安定性を確立することはできません。 選択は、要素に何をさせたいかから始まります。UCOEはオープンクロマチンの維持を助け、cHS4はその配列と配置に応じてバリアおよびエンハンサー遮断活動を提供します。どちらもターゲットの一次または不死化細胞株. での安定した発現を保証するものではありません。 クイック比較 基準 UCOE cHS4 主な役割 クロマチンの開口によるサイレンシング抵抗 ヘテロクロマチンの拡散を制限またはエンハンサー入力をブロック 配置 通常プロモーターの上流 バリア保護のためのカセット境界に配置; エンハンサーとプロモーターの間にエンハンサーブロッキングのために配置 シーケンス負担 指定されたフラグメントに依存; 提案されたテストアームは約1.5–3.0 kbを追加 ペアのフルレングスフランクは約2.4 kb; ペア250 bpコアは約500 bp追加します 設計上の注意点 フラグメントの境界とプロモーター活性が重要です 短いコアはバリア保護が少ない可能性があります 発現保持、クローン間の変動、デリバリー、成長および生存率を一緒に追跡します。発現が低下した場合、サイレンシングによる損失と判断する前にカセットの完全性とコピー数を確認してください。 決定は構築物に依存します。 <u>最終設計を対象種および生産関連の培養条件</u>,...
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使用済み培地の再生：バッチ方式と連続方式
培養肉のプロセス開発を行う場合、選択は原則として簡単です：バッチはロットの分離を厳密にします; 連続は保持時間を短縮し、メディアの戻りをスムーズにします - ただし、ループ制御、分岐、汚れ管理が仕様内に収まる場合のみです。 記事を要約すると次のようになります： バッチ再生 は使用済み培地を別のロットとして扱います：収集、清澄、調整、試験を行い、再利用のためにリリースします。 連続再生 は使用済み培地をライブループで扱います：引き出し、清澄、調整、補充、監視を行い、ほぼリアルタイムで戻します。 決定は保持時間, 汚染拡散, センサー制御, 汚れリスク, ユーティリティプロファイル, 労働パターン, およびステージ適合. に基づきます。 灌流は再生ではありません。 灌流は培養液を移動させ、再生は除去された流れに適用される処理です。 ステージフィットの場合、分割は通常明確です：シードトレイン = バッチ, 高密度増殖 = 連続, 分化 = バッチまたは段階的ハイブリッド. 一つの明確な数値が際立っています：>3,000万細胞/mL, 深層ろ過...
