世界初の培養肉B2Bマーケットプレイス：発表を読む
1 2
Steriflow

Steriflow SVシリーズ サニタリーサンプルバルブ

£1,315.00

(送料別 - カートで計算)

サイズ

ご注文前のご質問はありますか？
専門家のサポート - カスタムリクエスト - 迅速な対応

営業へのメール

在庫状況

Steriflowから研究および生産施設へ直接世界中に発送します。

配送

カートに追加 & 配送オプション/価格は、チェックアウトでお住まいの地域に応じて表示されます。

注文は、Steriflow によって直接処理され、必要に応じて温度管理された配送 が行われます。

お住まいの地域で適用される場合、現地の関税 & 税金が支払われます。

ライセンス

生細胞の国境を越えた出荷には、あなたの国で輸入許可が必要になる場合があります。出荷前に、供給業者が目的地の正確な要件を確認します。

サポート

購入には、完全な技術文書（CoAs、マニュアル、またはプロトコル）が自動的に提供されます。Steriflow からの直接的なアプリケーションサポートが含まれており、成功した実装を保証します。

支払い

購入注文も受け付けています。チェックアウト時に銀行振込を選択し、注文メモまたはメールでPO番号を提供してください。sales@cellbase.com

対応している支払い方法

  • カード （安全な処理、即時履行）
  • 銀行振込 （チェックアウト時に見積請求書が発行されます）
  • 購入注文 （注文時またはメールでPO番号を提出してください）

VATはベンダーの管轄に従って処理されます。

現地の関税 & 税金は該当する場合に支払われます。

カード支払いは即時に処理されます。銀行振込とPO注文は支払いの受領後に処理されます。

法務

ほとんどの製品には追加の契約は必要ありません。細胞株や特定の生物材料は、各サプライヤーからの初回購入時に材料移転契約（MTA） が必要です。これをデジタルで処理し、両者が出荷前にオンラインで署名します。同じサプライヤーからのその後の注文は即座に進行します。

Steriflow SVシリーズサンプルバルブは、高純度環境でのプロセスサンプル抽出のために特別に設計された高精度の衛生コンポーネントです。クリーンスチームおよび注射用温水（WFI）での使用に最適化されており、通常はサンプルクーラーの上流に設置され、流体モニタリングのための安全で無菌の方法を提供します。その堅牢な構造と特殊なシール技術により、気泡のないシャットオフと、最も過酷な熱サイクルでも長い耐用年数を保証します。

316Lステンレススチールで構成されたSVシリーズは、20 Ra µin（0.5 µm Ra）の内部電解研磨仕上げを特徴とし、細菌の付着を防ぐためにSF5衛生基準を満たしています。バルブはPerlast®シートシールとViton™ステムシールを使用しており、どちらもFDAおよびUSPクラスVIに準拠しています。この材料選択により、高温および攻撃的なプロセスメディアに対する優れた耐性が提供されます。ハンドルを上向きまたは横向きに取り付けると、バルブは完全に自己排水し、デッドレッグの可能性を排除し、毎回代表的なサンプルを確保します。

操作と統合の容易さを考慮して設計されたSVシリーズには、耐熱性のあるポリエーテルイミドハンドルと、1/4" から4"までの標準的な衛生的なトライクランプ接続が含まれています。116 psig (8.0 barg)までの動作圧力と176°Cまでの温度に耐えることができ、プロセスの純度と規制の遵守を優先するバイオ医薬品、食品、飲料メーカーにとって不可欠なツールです。

バイオ医薬品および高純度産業用。USPクラスVIおよびFDA準拠の湿潤材料を特徴としています。CIPおよびSIPプロセスと完全に互換性があります。

チェックアウトオプション

カード

  • American Express
  • Apple Pay
  • Bancontact
  • Diners Club
  • Discover
  • Google Pay
  • Maestro
  • Mastercard
  • MB WAY
  • Shop Pay
  • Union Pay
  • Visa

安全な支払い処理。カード情報は保存されません。

銀行振込または購入注文

チェックアウト時に銀行振込を選択すると、プロフォーマインボイスが発行されます。注文書を受け付けます。お支払いの確認後にご注文を処理します。

サプライヤーが注文を発送し、商品に対して直接請求書を発行します。

ショップ

インサイト & ニュース

すべて表示
  • Serum-Free Media Design for Myoblast Cell Lines

    Serum-Free Media Design for Myoblast Cell Lines

    For myoblast culture teams, I would select a serum-free medium by two outcomes: viable cell expansion and retained myotube-forming capacity. Start with your cell line’s history and measurable acceptance limits...

  • Secondary Fermentation of Spent Media Byproducts

    使用済み培地副産物の二次発酵

    培養肉のR&Dチームにとって、私の基本ルールはシンプルです：接種前にバッチの組成と安全限界に基づいて使用済み培地を受け入れる、条件付けする、または拒否する, ことです - 元の培地レシピではありません。 二次発酵は残留栄養素を異なる生物に供給します。それは直接的な培地の再利用ではありません. Chlorella BDH-1 を用いた実験室作業はパイロットテストをサポートしますが、生産収量や資源節約を確立するものではありません。[1] 私はプロセスを**三つの原料ゲート - 組成、清澄化、滅菌 - **を通じて評価します。その後： ホスト、接種物、給餌モードを適格な原料に合わせます。 混合、酸素移動, 必要に応じた光の供給、排気の封じ込めを確認します。 複数のバッチにわたって収穫、製品品質、保持時間、廃棄物処理を検証します。 製品単位ごとのエネルギー、水、廃棄物を測定し、回収および拒否されたバッチを含めます。 私のリリースルール：<u>発酵の成功だけでは不十分です</u>. 意図された使用の安全性試験、バッチの追跡可能性、および適用される英国の規制経路の確認がまだ必要です。 使用済み培地の二次発酵：原料からリリースまで 原料の試験、調整、滅菌 接種前に、各バッチは3つのゲートを通過する必要があります：組成、明確化、滅菌. 原料の組成と受け入れ限界 使用済み培地の各バッチを、元の培地レシピではなく、意図された食品または飼料の使用に対してテストします。培養肉生産からの使用済み培地については、その使用のためのソース仕様に対してバッチを評価します。[5] 残留アミノ酸、糖類、その他の栄養素を測定します。[1][5] 病原体、ウイルス、カビ、酵母、マイコトキシン、生体アミン、重金属のテストを設定するために、ソースベースのハザード評価を使用します。[5] パラメータ 発酵効果 受け入れ、条件付きまたは拒否...

  • UCOE vs cHS4 for Stable Gene Expression

    安定した遺伝子発現のためのUCOEとcHS4の比較

    培養肉のR&Dチーム向けには、初期の発現強度ではなく、測定された発現保持によってUCOEまたはcHS4を選択します。 独立したクローン間で保護されていないコントロールと一致する構造を比較します。4回の継代は初期のスクリーニングをサポートできますが、長期的な安定性を確立することはできません。 選択は、要素に何をさせたいかから始まります。UCOEはオープンクロマチンの維持を助け、cHS4はその配列と配置に応じてバリアおよびエンハンサー遮断活動を提供します。どちらもターゲットの一次または不死化細胞株. での安定した発現を保証するものではありません。 クイック比較 基準 UCOE cHS4 主な役割 クロマチンの開口によるサイレンシング抵抗 ヘテロクロマチンの拡散を制限またはエンハンサー入力をブロック 配置 通常プロモーターの上流 バリア保護のためのカセット境界に配置; エンハンサーとプロモーターの間にエンハンサーブロッキングのために配置 シーケンス負担 指定されたフラグメントに依存; 提案されたテストアームは約1.5–3.0 kbを追加 ペアのフルレングスフランクは約2.4 kb; ペア250 bpコアは約500 bp追加します 設計上の注意点 フラグメントの境界とプロモーター活性が重要です 短いコアはバリア保護が少ない可能性があります 発現保持、クローン間の変動、デリバリー、成長および生存率を一緒に追跡します。発現が低下した場合、サイレンシングによる損失と判断する前にカセットの完全性とコピー数を確認してください。 決定は構築物に依存します。 <u>最終設計を対象種および生産関連の培養条件</u>,...

  • Spent Media Regeneration: Batch vs Continuous Routes

    使用済み培地の再生：バッチ方式と連続方式

    培養肉のプロセス開発を行う場合、選択は原則として簡単です：バッチはロットの分離を厳密にします; 連続は保持時間を短縮し、メディアの戻りをスムーズにします - ただし、ループ制御、分岐、汚れ管理が仕様内に収まる場合のみです。 記事を要約すると次のようになります： バッチ再生 は使用済み培地を別のロットとして扱います：収集、清澄、調整、試験を行い、再利用のためにリリースします。 連続再生 は使用済み培地をライブループで扱います：引き出し、清澄、調整、補充、監視を行い、ほぼリアルタイムで戻します。 決定は保持時間, 汚染拡散, センサー制御, 汚れリスク, ユーティリティプロファイル, 労働パターン, およびステージ適合. に基づきます。 灌流は再生ではありません。 灌流は培養液を移動させ、再生は除去された流れに適用される処理です。 ステージフィットの場合、分割は通常明確です：シードトレイン = バッチ, 高密度増殖 = 連続, 分化 = バッチまたは段階的ハイブリッド. 一つの明確な数値が際立っています：>3,000万細胞/mL, 深層ろ過...

  • Gene Knockout Design for Cultivated Meat Cell Lines

    培養肉細胞株のノックアウト設計

    ノックアウトが定義されたプロセス特性を改善しない場合、それは単なる編集であり、使用可能な細胞株ではありません。 バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、培養肉のR&Dチームにとって、この記事の主なポイントはシンプルです：ボトルネックから始め、編集前に合格/不合格の基準を設定し、次に低い倍加時間、懸濁成長、または表面抗原の除去などの測定可能な生産の読み出し を中心にワークフローを構築します。この記事はまた、プールレベルの編集データがガイドランキングに役立つが、リリースグレードのノックアウトにはクローンレベルの遺伝子型、タンパク質損失データ、系統チェック、およびマルチパッセージプロセステスト（しばしば一次細胞対不死化細胞株を含む）が必要であることを明確にしています。 2024年7月のIvy Farmのケースでは、豚および牛の筋芽細胞と脂肪由来幹細胞におけるNF2 ノックアウト が、倍加時間の短縮、懸濁培養のサポート、および系統マーカーの保持と関連付けられました。しかし、その記事はそれを普遍的なものとして扱っていません。編集されたクローンを進める前に、種、系統、およびターゲットに特化した検証がまだ必要です。 記事が指示すること: 編集目標をコストではなくプロセスの観点で定義する 成長、サスペンション適合性、マーカー保持、継代安定性の閾値を事前に設定する 経路の役割、系統効果、安全性に関連するリスクを確認した後にターゲット遺伝子を選択する 構成的コーディングエクソンに対するガイドを設計し、まずPCRとサンガーで親ローカスを確認する 編集者の露出時間を制限するために可能な限り RNPデリバリーを用いたドナーなしのワークフローを使用する バルクプールを初期スクリーニングとして扱い、ノックアウトの証明とはしない 二アレル欠失を確認し、その後タンパク質の欠如を確認する 一致する親またはCas9のみ、sgRNAなしのコントロールに対してクローンを検証する 4つの層を通過したラインのみをリリースする: 編集の同一性、分子の結果、細胞機能、生産適合性 いくつかの技術的なポイントが際立っています。この記事では、野生型SpCas9が3から5のミスマッチ, を許容できるため、オフターゲットのレビューを後回しにできないことを指摘しています。また、 17から18 bpの短縮ガイドがオフターゲット活性を500倍も削減でき、オンターゲット性能の低下がほとんどないことも指摘しています。そして、ドナーなしの修復では混合インデルが生じることが多いため、「編集済み」が「ヌル」を意味するとは限らない - フレーム内アレルが機能を保持する可能性がある. この記事が最も役立ったのは、その規律です。遺伝子型だけでは不十分であり、急成長だけでは不十分であり、1回の継代からの懸濁データだけでは不十分です。ノックアウトラインは、系統のアイデンティティを保持し、少なくとも四重複の継代で安定しており, 、生産で直面する同じ培養形式と密度で依然として機能する場合にのみ重要です。 それが記事の残りの部分のフレームです：ボトルネックから、デザインの編集、スクリーンのクローン、リリースの決定へと進み、それらのステップを混同しないようにします。 培養肉細胞株のための遺伝子ノックアウトワークフロー ターゲット遺伝子を選択し、適切な編集戦略を選ぶ...

  • TEA vs LCA in Waste System Uncertainty

    廃棄物システムの不確実性におけるTEAとLCAの比較

    同じ培養肉の廃棄ルートを判断するためにTEA とLCA を使用する場合、異なる答えを期待するべきです。 それはモデリングの失敗ではありません。TEAは工場内のコストリスクをテストするため, 、LCAはライフサイクル全体の影響リスクをテストするために起こります。. バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、培養肉のR&Dチームにとって, 核心はシンプルです：同じ質量とエネルギーバランス, 、同じ廃棄経路, 、1 kgの食用製品を基準にすること - それぞれの方法が自分の役割を果たすようにします。 この記事を一度に読む: TEA は尋ねます: この廃棄ルートは£/kg、CAPEX、OPEX、損益分岐点にどのような影響を与えるのか? LCA は尋ねます: 同じルートがGHG排出量、水使用量、土地使用量、富栄養化、毒性にどのような影響を与えるのか? 廃棄物の選択 、例えば現場での処理、外部委託処分、メディア回収は、両方のモデルを同時にシフトさせることができます。 TEA, の主な拡散源には、メディアコスト、回収率、ユーティリティシステム設計, 処分費用、労働および政策の仮定. LCA, の主な拡散源には、電力ミックス、配分ルール、機能単位の選択、輸送距離、欠落しているインベントリデータ. 単一の仮定がLCAを大きく揺るがすことがあります: 記事は2.5対13を引用しています。電力ミックスの変更だけで製品1kgあたり5 kg CO₂-eq。...

  • Trace Element Tuning for Muscle Cell Lines

    筋細胞株のための微量元素調整

    ラベルの用量だけで微量元素を調整すると、筋細胞が実際に見ているものを見逃す可能性があります。 筋由来の培養肉培地では、名目上の 濃度と実際に供給される 濃度のギャップが、成長、存続率、酸化還元状態、および分化を一回の実行から次の実行へと変化させる可能性があります。 私がこれを設定するなら、まず4つのことを行います: 鉄、亜鉛、セレン、銅、マンガンの すべての入力源をマッピングする 供給されたレベルを確認する, 単なる配合目標ではなく 細胞状態でスクリーニングする, なぜなら、増殖と分化は同じミネラルウィンドウを必要としないからであり、これは一次細胞系と不死化細胞系の間で異なる要因です 分析で最終ウィンドウをロックする, 混合、滅菌、保存後の調製培地を使用して、無血清培地最適化キットを使用する この記事の核心は簡単です: 微量元素の制御はまず生物利用能の問題であり、次に投与の問題です. 鉄はキャリアの選択と酸化状態に依存します。亜鉛はしばしば厳しい作業範囲を持っています。 セレンは、GPx、ROS、および生存率 に対して設定されるべきであり、紙上の用量ではありません。銅とマンガンは、最初の3つが範囲内に入った後、レドックスとミトコンドリアの安定性をテストするのに役立ちます。 バイオプロセスエンジニアと細胞培養チームにとって、ワークフローは明確です：ベースラインマッピングから始め、Fe/Zn/Se を最初にスクリーニングし、次にCu/Mn, をテストし、ICP-MS またはICP-OES でロット間の回収を確認します。そして 準備された培地。これが、変動する処方を制御されたものに変える方法です。 筋細胞株のための微量元素最適化ワークフロー 細胞培養メディア制御の最前線：CCMフィンガープリンティングによるテストの未来 sbb-itb-ffee270濃度を変更する前にベースラインを設定する すべての微量元素入力の完全なインベントリから始めます。 各微量元素を変更する前に、各成分から培養に何がすでに入っているかを知る必要があります。 すでに配合されている微量元素をマッピングする...

  • Partial Media Replacement in Cultivated Meat: Key Factors

    培養肉における部分的な培地交換：重要な要因

    バイオプロセスエンジニアや培養肉のR&Dチームにとって、部分的な培地交換は、交換率, タイミング, 細胞密度, および廃棄物負荷 を培養段階と容器に合わせた場合にのみ機能します。 記事を要約するとこうなります：30–50%の日次交換 は高密度拡張の有用な出発点となり得ますが、ルールではありません 。培養が80–130+百万細胞/mL, に向かうと、スケジュールは通常、グルコースの減少、乳酸、アンモニア、細胞生存率、混合時間、酸素移動, に従う必要があり、単に時計に従うだけではありません。 プロセスに部分交換が適しているかどうかを判断する際には、まず次の5つの質問に焦点を当てます： 各サイクルでどれだけの培地を交換していますか？ 交換を引き起こす要因は何ですか：時間、グルコース、または生存細胞密度？ 現在のスケジュールでは、どの密度で乳酸とアンモニアを範囲内に保つことができなくなりますか？ 容器は、過度のせん断を加えることなく、入ってくる培地を十分に速く混合できますか？ 部分交換はまだ適切なモードですか、それともフィードバッチの限界やパーフュージョンの領域に近づいていますか？ 部分交換はフィードバッチ とパーフュージョン: の間に位置します。 バッチ： 交換なし フィードバッチ： 栄養素が追加され、廃棄物は残る 部分交換： 使用済み培地の一部が除去され、間隔を置いて交換される パーフュージョン： 細胞保持とともに培地が連続的に交換される 簡単な比較 モード 栄養管理...