<tc>Defined Bioscience</tc> FGF2-G3 成長因子（牛由来）

£67.00

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製剤

液体（使用準備完了）粉末（再構成）

サイズ

10 µg 50 µg 100 µg 1 mg

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法務

ほとんどの製品には追加の契約は必要ありません。細胞株や特定の生物材料は、各サプライヤーからの初回購入時に材料移転契約（MTA）が必要です。これをデジタルで処理し、両者が出荷前にオンラインで署名します。同じサプライヤーからのその後の注文は即座に進行します。

Defined BioscienceのFGF2-G3（牛）は、培養肉細胞培養用に設計された牛線維芽細胞成長因子2の熱安定化再組換えバージョンです。これは、最小限の培地補充で牛の筋肉および幹細胞の増殖と維持をサポートします。このバリアントの強化された熱安定性は、37 °Cでの長期間にわたる一貫した活性を保証し、日々または週末の培地交換の必要を排除し、長期培養におけるプロセスの変動を減少させます。

タンパク質配列は、Bos taurus FGF2（UniProt P03969）から派生しており、熱安定性と生物活性を向上させるために9つの重要なアミノ酸置換が導入されています。これらの修正は、ヒトFGF2-G3バリアントで効果的であることが証明されたものを反映しており、同様の安定性の利点をもたらします。FGF2-G3（牛）は、E. coli, 動物由来成分フリーで再組換え発現され、SDS-PAGEによって確認された95%以上の純度で精製されています。NIH-3T3増殖アッセイにおいてEC₅₀が1 ng/mL未満であることを示し、天然のFGF2と比較して低濃度で高い効力を示します。

無菌の1 mg/mL液体または凍結乾燥粉末として供給されるこのタンパク質は、標準的なバッファー製剤に再構成され、血清不使用および化学的に定義された培地で野生型FGF2の代わりに直接使用できます。その種特異的な配列により、培養肉の開発およびスケールアップ研究に使用されるウシ細胞株に最適です。

研究開発用のみ。人間または診断用途には使用できません。

スケール互換性

Production scale
保存期間（月）

12
保管温度

-20°C
検証状況

研究グレード
製品滅菌方法

無菌ろ過済み
コールドチェーンクラス

Frozen (-20°C)
混合後の安定性（最大日数）

21
混合後の安定性（最小日数）

0
動物由来成分なし

Yes
バッファー添加物許可

Yes
バッファーシステム

TRIS
化学的に定義

Yes
濃度

1X
再濾過禁止

Yes
エンドトキシンレベル（EU/mL）

<1
グルコース（mg/L）

0
培地カテゴリー

成長
解凍後すぐに混合

Yes
最適化対象

牛細胞株、培養肉、FGF2依存性細胞培養
pH最大

8.2
pH最小

7.8
解凍後の安定性（最大日数）

21
血清含有量

無血清
無菌フィルター孔径 (µm)

0.22
動物由来成分不使用

Yes
外観

クリアリキッド
クリアリキッド
クリアリキッド
クリアリキッド
ホワイトパウダー
ホワイトパウダー
ホワイトパウダー
ホワイトパウダー
純度 (%)

95
研究用限定

Yes
温度制御

-20°C
最低温度 (°C)

-20°C
細胞株特異性

Avian, Bovine, Seafood, Porcine

チェックアウトオプション

カード

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灌流システム：使い捨てタイプと再利用タイプの比較
培養肉の灌流を行う場合、セットアップの選択は通常、次の質問に帰着します：主な負担をどこに置きたいか - 使い捨ての流路か、清掃と再検証か。私はこのように分けています：シングルユースは、研究開発&、パイロット作業、短期間の運転に適しています再利用可能なガラスまたはステンレス鋼は、安定したキャンペーンや共有プラントの使用に適していますどちらの場合でも、細胞保持が依然として主な圧力点であり、特に ATFまたは TFFの場合です。選択は容器だけでなく、チューブのレイアウト、汚れ制御、無菌手順, およびターンアラウンド時間も変わります。保持が文化の形式に組み込まれている場合、充填層システム, のように、決定は取り扱い、清掃、およびバッチ間のリセット時間に向かってシフトします。一つの詳細が際立っています。Ever After Foods は、その食用パックドベッドシステムが 20,000 L の撹拌タンクセットアップの出力に less than 2,000 L で匹敵できると述べています [1]. これは 10x...
2026年8月7日
LAL対rFC：エンドトキシン試験法の比較
培養肉サンプルでエンドトキシンをテストする場合、適切な方法はキットのラベルよりもサンプルマトリックスに依存します。要約すると次のようになります：LALはおなじみのワークフローを提供します, 一方でrFCはβ-グルカンが豊富な培地での偽陽性を減らし、動物由来を避けることをサポートします. しかし、どちらの方法も原則だけで選ぶべきではありません。メディア、バイオリアクターブロス、収穫サンプルに関して、主な質問はシンプルです：実際のマトリックスでクリーンで回収可能なEU/mLデータを提供するアッセイはどれか? あなたにとって最も重要なことは次の通りです： LALはカブトガニの溶解物を使用し、 Factor Gの交差反応性に影響される可能性があります rFCは組換えFactor Cを使用し、ベータグルカンが存在する場合にしばしば適しています両方の方法は、成長因子 , 界面活性剤、キレート剤、細胞残骸、または高バイオマスを含む複雑なサンプルで失敗する可能性があります連続希釈、MVD設定、スパイク回収はマトリックス適合性のための基本的なチェックですバリデーションは、バッファー, だけでなく、実際のプロセスマトリックスで行う必要がありますもしLALとrFCが一致しない場合, 、最初に希釈、阻害、試薬ロット、マトリックス効果を確認してから数値を信頼しますグラム陰性菌由来のエンドトキシンは、細胞の健康、プロセスの一貫性、およびバッチの変動に影響を与える可能性があります。それが、培養肉のR&DおよびQCにおいて、この選択が重要である理由です。特にUSPおよびPh. Eur. の期待が適用される場合において。従来のLALと組換え試薬の比較ケープコッド社のAPRウェビナー効果的なエンドトキシン試験は、培養肉製品の安全性と純度を確保するための細胞モニタリングプロトコルの重要な要素です。sbb-itb-ffee270 クイック比較基準 LAL rFC 試薬の供給源カブトガニ溶解物...
2026年8月5日
再細胞化のためのバイオリアクター設置：ベストプラクティス
最初に細胞播種が不均一である場合、後で灌流しても修正できません。バイオプロセスエンジニアや培養肉のR &Dチームにとって、セットアップは4つの仕事を同時に行う必要があります：チャンバーを足場に合わせる、回路を閉じて無菌に保つ、高流量の前に付着を段階的に行う、そしてTMP, フラックス, pH, および入口-出口の溶存酸素などの足場レベルの信号を監視すること。この記事を要約するとこうなります：まず組織と足場を定義し、そのターゲットに合わせてバイオリアクターを構築する. 厚さ1 cm, を超える構造物には、酸素と栄養素の輸送を制御するために灌流が必要です。また、プロセスを2つの明確なフェーズに分けます：静的または非常に低流量の付着を最初に行い、その後、培養のためのログフローランプを行います。この選択により、初期の洗い流しを削減し、後での故障の追跡を容易にすることができます。短いバージョンが必要な場合は、こちらです: ハードウェアではなく, ターゲットから始める組織の種類、種、足場の多孔性、チャネルの配置、厚さがチャンバーデザインと灌流経路の限界を設定します。ランを2つのフェーズに分けるまず接着。次に、アンカーが確立されたら段階的に流れを増やします。灌流を足場の形状に合わせるチューブ状の足場は管腔内流れに適しています。シート状の形式は内部と外部の流れが必要な場合があります。複雑な3D形状は多経路灌流が必要なことが多いです。足場の開放性と細胞接着に合わせて播種を選ぶ静的滞留は多くの接着依存性細胞に適しています。低流量灌流は多孔性足場への浸透を改善できますが、タイミングが悪いと洗い流される可能性があります。足場を読むだけでなく、ループを読む圧力降下の上昇、TMPの上昇、フラックスの低下、または入口と出口のDOの変化は、組織の損失が明らかになる前に、汚れ、チャネルの詰まり、または酸素供給の不良を示す可能性があります。バイオリアクター再細胞化: 培養肉のための4段階セットアッププロセス非ヒト霊長類肺の脱細胞化 & 再細胞化 l プロトコルプレビュークイック比較...
2026年8月3日
パーフュージョンとバッチ給餌：栄養供給の比較
短い答えが必要な場合: バッチフィーディングは運用が簡単で、パーフュージョンは高い細胞密度で栄養素と廃棄物をより厳密に管理できます。バイオプロセスエンジニアや培養肉のR&Dチームにとって、選択は通常次のようになります: バッチまたはフィードバッチは、セットアップが簡単で、ロットごとの追跡が容易で、初期のR &Dに適していることが多いです。パーフュージョンは、基質レベルをより安定させ、ラン中に乳酸、アンモニア、溶存CO₂を除去し、より高い生存細胞密度をサポートします。トレードオフは明確です: 反応器容積あたりの出力が多いか、システム負担が多いか. 大規模では、バッチは副産物の蓄積とガス移動によって制限されることが多く、パーフュージョンは培地使用、保持システムの信頼性、および自動化. によって制限されることが多いです。メディアのスクリーニング、細胞の挙動のチェック、または短期開発キャンペーンを実施する場合は、バッチまたはフィードバッチを選択します。密集した増殖を推進したり、リアクターのフットプリントを削減したりする場合は、保持ハードウェア、センサー、およびメディア供給計画がすでに整っている場合に限り、パーフュージョンを検討します。クイック比較基準バッチ供給 / フェッドバッチパーフュージョン栄養供給開始時に追加、または計画的に供給継続的な培地交換廃棄物処理収穫まで廃棄物が残る培養中に廃棄物が排出される生存細胞密度低い高い体積生産性低い高い運転期間...
2026年7月31日
培養肉副産物からの栄養回収
培養肉のプロセス開発を行う場合、栄養素の回収は主にストリームの選択、純度の目標、および放出制御の問題です。簡単に言えば、使用済み培地には未使用のアミノ酸、ビタミン、ミネラル、およびいくつかのタンパク質因子がまだ含まれていることが多く、バイオマス残渣にはタンパク質および細胞内物質が含まれています。そして、各ストリームは再利用または転用の前に異なる回収ルートが必要です。バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、および培養肉のR&Dチーム, にとって、この記事は次のように要約されます: まず用語を分けてください: 栄養素の回収は、培地のリサイクル、副産物の利用、または廃水処理とは異なります。最も重要なストリームから始めてください: 使用済みの増殖および分化培地、収穫残渣、および細胞破片。仕様を満たす最も軽い回収ルートを選択: 明確化、膜ステップ、沈殿、クロマトグラフィー、または生化学的変換。故障点を制御する: 乳酸、アンモニア、ファウリング、保持損失、洗浄負荷、汚染リスク、およびバッチドリフト。リリース基準による再利用のみ: 組成、pH、浸透圧、微生物負荷、およびバッチ記録がすべて合格する必要があります。低品質の分画を最適な場所に振り分ける: 加水分解物、発酵飼料、動物飼料の投入物、または肥料ルート。簡単に考える方法: まずストリームをマッピングし、次に残っているものを測定し、次に最良の結果がメディア準備内での再利用か、コアプロセス外での使用かを決定する. その記事はまた、英国の製造側にも注意を向けています：リスクベースの品質レビュー、バッチ文書、および変更管理は、回収されたストリームが生産に戻る場合、オプションではありません。簡単な要約: もし副流が物理的な分離だけでは希薄すぎるか混ざりすぎている場合、酵素的または発酵による変換が役立つかもしれません - ただし、追加の処理、管理、およびコストが見合う場合に限ります。それがこの記事の残りの部分の枠組みです。培養肉生産で回収可能な栄養素が見つかる場所これらの栄養素クラスは、少数のプロセスストリームに現れる傾向があります。実際には、回収可能な栄養素は、いくつかの予測可能な場所に集中しています: 増殖および分化段階からの使用済み培地、細胞の破片および収穫残渣、栄養素入力として使用される外部の副流です。使用済み培地には、細胞が通常追加されたものの一部しか消費しないため、溶解したアミノ酸、ビタミン、ミネラル、成長因子が含まれています。収穫からの細胞破片や非製品バイオマスには、抽出およびアップグレード可能なタンパク質、脂質、細胞内代謝物が含まれています。農業や発酵由来の入力などの外部サイドストリームは、バイオリアクターに入る前に培地成分に加工することができます。最初の作業は、実際には慎重な分析が必要であっても、原則としては簡単です：どのストリームが存在するかを把握し、それらに何が含まれているかを特定する . このステップは、回収方法の選択の前に行われます。その後、焦点はターゲット画分の抽出と精製に移ります。sbb-itb-ffee270栄養素の回収と精製方法...
2026年7月29日
ダウンストリームプロセッシング：バイオマス精製チェックリスト
収穫されたバイオマスが定義されていない場合、下流のプロセスはすでに軌道を外れています。培養肉チームにとって、核心的な仕事はシンプルです：全細胞、凝集体、または構造化バイオマスを低損傷で回収し、残留培地、タンパク質、DNA、およびデブリを食品グレードの限界まで削減し、収穫から最終保持まで仕様内に留まる材料のみをリリースします。このチェックリストを4つの通過ゲートにまとめます：最初に製品ターゲットを設定する: 全細胞、凝集体、および構造化バイオマスは、同じせん断または分離設定を許容しません。スループットを満たす最も穏やかな明確化ステップを選択する: 逆流遠心分離、深層ろ過、マイクロフィルトレーション/TFF、および高速遠心分離は、それぞれせん断、フットプリント、洗浄負荷、およびスケール適合をトレードオフします。ランの前に測定可能なエンドポイントを確定する: pH、導電率、濁度、総固形物、収率、不純物マーカー、濃縮係数、限外濾過体積、TMP、およびフラックス。清掃とQCを最終段階の書類作業として扱わない: クローズドトランスファー、微生物負荷管理ポイント、CIP/SIP記録、清浄水回収チェック、および段階ベースの分析がバッチを進めるか停止するかを決定する。いくつかのポイントがすぐに目立ちます: 食品グレードの出力が目標であり、バイオファーマグレードの純度ではありません膜工程におけるTMPとフラックスのドリフトは初期警告サインですサンプリングの場所は限界そのものと同じくらい重要ですスケールアップは、フィルター容量がランごとに安定するまで待つべきです私が注目しておくべきプロセスフローの短縮版はこちらです: バイオマスを損傷せずに収穫と清澄化清澄化された流れの品質を確認し、研磨または濃縮の前に固定エンドポイントまで濃縮/UF/DFを実行汚染を制御し、清掃を確認プロセス中および最終QCがすべて合格した場合にのみリリース培養肉の下流処理: 4段階の精製ワークフロークイック比較段階主な決定次に進む前に確認すること収穫...
2026年7月27日
再利用可能 vs 使い捨てコールドチェーン包装
イギリスで培養肉を移動する場合, 包装の選択は通常簡単です: 再利用可能なパックは、信頼できる返却がある閉じた、繰り返しのレーンに適しており、使い捨てパックは、開いた、一方向または不規則なレーンに適しています。バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、および培養肉のR&Dチームにとって、決定は単なるパックのコストに関するものではありません。私はまず三つのことを確認します: レーンの管理, 輸送全体の温度保持, そして配送後に何が起こるか. 空の資産が戻ってこない場合、再利用可能なモデルはすぐに失敗する可能性があります。一方向のパックが何度も使用されると、廃棄物と処分の負担が同じくらい速く積み上がります。この比較は後処理の流通包装のみに焦点を当てています。それはカバーします: 再利用可能なシステム: 耐久性のある断熱コンテナ、しばしばVIP断熱材, 返却回収、清掃、検査、再循環使い捨てシステム: 返却ループが弱いまたは存在しないルート用の一方向断熱シッパー主要なチェック項目: 熱検証、パックアウト管理、逆流、清掃、資産追跡、廃棄、英国の冷蔵/冷凍配送適合私がそこから得るもの: ルートが固定され、返却率が高い場合は再利用可能なものを使用するルートが変動するか一方向の場合は使い捨てを使用する実際のルートに対して両方を検証する, ラボスタイルの試験条件ではなく包装を製品保護の一部として扱う, 単なる購買項目ではなくクイック比較基準再利用可能な包装使い捨て包装最適なレーンタイプクローズドループ、繰り返しルートオープン、一方向、不規則ルート...
2026年7月24日
リアルタイム細胞モニタリング：光学的透明性の課題
足場を通して見ることができなければ、読み出しを信頼することはできません。培養肉では、光学モニタリングがしばしば失敗するのは、光散乱と屈折率の不一致. という2つの単純な理由によるものです。構造が薄い層から1–10 mmの3D組織に移行するにつれて、これらの制限が画像の深さを削り、内部構造をぼかし、生存率、整列、ECMの蓄積の変化を隠します。こちらが短いバージョンです: 薄くて透明な足場は、広視野または共焦点顕微鏡でのイメージングが最も簡単です厚い3D構造は通常、 OCT、OCM、またはOPTが必要ですハイドロゲルは、繊維状マットや多孔性ポリマーサポートよりも光学的アクセスをサポートする傾向があります細胞密度、膨潤、およびマトリックス沈着は、時間の経過とともにイメージングを悪化させることがよくあります 1日目に機能するセットアップは、成熟時に透過率と深さを確認しないと、培養終了時に失敗する可能性がありますイメージングは、閉じた無菌のインキュベーター対応システム内でも機能しなければなりませんプロセス中のモニタリングのための足場を選ぶ場合、私はまず一つの質問から始めます：最終的な組織の厚さでどれだけの有用な信号が通過するか？この一つの確認が、スケールアップの前に足場のクラスとイメージング方法の両方を絞り込むのに役立ちます。クイック比較足場または方法最適な適合主な制限クリアハイドロゲル + 共焦点薄い構造、高詳細な表面および近表面イメージング厚さと散乱が増加すると深度が急速に低下ハイドロゲル +...
2026年7月22日