ตลาด B2B เนื้อสัตว์เพาะเลี้ยงแห่งแรกของโลก: อ่านประกาศ
ดูเป็น
Qkine

Qkine ผลิตปัจจัยการเจริญเติบโต ไซโตไคน์ และโปรตีนที่มีฤทธิ์ทางชีวภาพที่เกี่ยวข้องที่มีความบริสุทธิ์สูง ปราศจากแหล่งกำเนิดจากสัตว์ ซึ่งใช้ในการวิจัยเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยงและการพัฒนากระบวนการชีวภาพ บริษัทผลิตโปรตีนเกรดอาหารและโปรตีนรีคอมบิแนนท์ที่ออกแบบมาเพื่อสนับสนุนการบำรุงรักษา ขยายตัว และการแยกแยะเซลล์ต้นกำเนิดในระบบเซลล์โค สุกร และอาหารทะเล วัสดุทั้งหมดผลิตในสหราชอาณาจักรภายใต้การรับรอง ISO 9001 พร้อมเอกสารและการตรวจสอบย้อนกลับอย่างครบถ้วน

แคตตาล็อกของQkine รวมถึงโปรตีนที่ตรงกับสายพันธุ์ ตัวแปรปัจจัยที่ทนความร้อน และสูตรที่ปราศจากโปรตีนพาหะที่ให้ประสิทธิภาพที่สม่ำเสมอในสื่อที่ปราศจากเซรั่มและกำหนดทางเคมี ผลิตภัณฑ์เหล่านี้สนับสนุนการวิจัยและพัฒนา การเพิ่มประสิทธิภาพการขยายขนาด และกระบวนการทำงานที่สอดคล้องกับกฎระเบียบสำหรับผู้ผลิตเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยงที่มุ่งลดความแปรปรวนและปฏิบัติตามมาตรฐานระบบอาหาร

คอลเลกชันอื่นๆ

ข้อมูลเชิงลึก & ข่าวสาร

ดูทั้งหมด
  • Perfusion Systems: Single-Use vs Reusable Setup

    Perfusion Systems: Single-Use vs Reusable Setup

    If you run perfusion for cultivated meat, the setup choice usually comes down to one question: where do you want the main burden to sit - in disposable flow paths...

  • LAL vs rFC: Endotoxin Test Method Comparison

    LAL กับ rFC: การเปรียบเทียบวิธีทดสอบเอนโดท็อกซิน

    หากคุณทดสอบเอนโดทอกซินในตัวอย่างเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง วิธีที่เหมาะสมขึ้นอยู่กับเมทริกซ์ของตัวอย่างมากกว่าฉลากชุดทดสอบ ฉันจะสรุปได้ดังนี้: LAL ให้คุณมีขั้นตอนการทำงานที่คุ้นเคย, ในขณะที่ rFC สามารถลดผลบวกปลอมในสื่อที่มีเบต้า-กลูแคนสูงและสนับสนุนการจัดหาที่ปราศจากสัตว์. แต่ไม่ควรเลือกวิธีใดวิธีหนึ่งเพียงเพราะหลักการเท่านั้นสำหรับตัวอย่างสื่อ, น้ำซุปในเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพ, และการเก็บเกี่ยว คำถามหลักคือ: การทดสอบใดที่ให้ข้อมูล EU/mL ที่สะอาดและสามารถกู้คืนได้ในเมทริกซ์จริงที่คุณใช้งาน? นี่คือสิ่งที่สำคัญที่สุดสำหรับคุณ: LAL ใช้ไลเซตจากปูเกือกม้าและอาจได้รับผลกระทบจาก การเกิดปฏิกิริยาข้ามของ Factor G rFC ใช้ Factor C ที่สร้างขึ้นใหม่และมักจะเหมาะสมกว่าเมื่อ เบต้า-กลูแคน มีอยู่ ทั้งสองวิธีอาจล้มเหลวในตัวอย่างที่ซับซ้อน ที่มี...

  • Bioreactor Setups for Recellularization: Best Practices

    การตั้งค่าชุดไบโอรีแอกเตอร์สำหรับการรีเซลลูลาริไซเซชัน: แนวทางปฏิบัติที่ดีที่สุด

    หากการหว่านเซลล์ไม่สม่ำเสมอตั้งแต่เริ่มต้น การไหลเวียนในภายหลังจะไม่สามารถแก้ไขได้ สำหรับวิศวกรกระบวนการชีวภาพและทีมวิจัยและพัฒนาการผลิตเนื้อสัตว์เพาะเลี้ยง & การตั้งค่าต้องทำงานสี่อย่างพร้อมกัน: จับคู่ห้องกับโครงสร้าง, รักษาวงจรให้ปิดและปลอดเชื้อ, จัดเตรียมการยึดก่อนการไหลที่สูงขึ้น, และตรวจสอบสัญญาณระดับโครงสร้าง เช่น TMP, ฟลักซ์, pH, และออกซิเจนละลายที่ทางเข้า–ทางออก ฉันจะสรุปบทความนี้ว่า: กำหนดเนื้อเยื่อและโครงสร้างก่อน จากนั้นสร้างไบโอรีแอคเตอร์รอบเป้าหมายนั้น. สำหรับโครงสร้างที่หนากว่า 1 ซม., จำเป็นต้องมีการไหลเวียนเพื่อควบคุมการขนส่งออกซิเจนและสารอาหาร ฉันจะแยกกระบวนการออกเป็นสองขั้นตอนที่ชัดเจน: การยึดแบบคงที่หรือการไหลต่ำมาก ก่อน จากนั้นเพิ่มการไหลที่บันทึกไว้สำหรับการเพาะเลี้ยง การเลือกเพียงครั้งเดียวนี้สามารถลดการล้างออกในช่วงต้นและทำให้การติดตามข้อบกพร่องง่ายขึ้นในภายหลัง หากคุณต้องการเวอร์ชันสั้น นี่คือ: เริ่มต้นด้วยเป้าหมาย, ไม่ใช่ฮาร์ดแวร์...

  • Perfusion vs Batch Feeding: Nutrient Delivery Compared

    การเปรียบเทียบการให้อาหารแบบต่อเนื่องกับแบบเป็นชุด: วิธีการส่งสารอาหาร

    หากคุณต้องการคำตอบสั้น ๆ: การป้อนแบบแบทช์นั้นง่ายต่อการดำเนินการ ในขณะที่การป้อนแบบเพอร์ฟิวชั่นให้การควบคุมสารอาหารและของเสียที่แน่นหนากว่าในความหนาแน่นของเซลล์สูง สำหรับวิศวกรกระบวนการชีวภาพและทีมวิจัยและพัฒนาของเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง การเลือกมักจะลงเอยที่นี่: การป้อนแบบแบทช์หรือเฟดแบทช์ ตั้งค่าง่ายกว่า ติดตามได้ง่ายกว่าแบบล็อตต่อล็อต และมักจะเหมาะสมกว่าสำหรับการวิจัยและพัฒนาในระยะแรก& การป้อนแบบเพอร์ฟิวชั่น รักษาระดับสารตั้งต้นให้คงที่มากขึ้น กำจัดแลคเตท แอมโมเนีย และ CO₂ ที่ละลายระหว่างการดำเนินการ และรองรับความหนาแน่นของเซลล์ที่มีชีวิตได้สูงกว่ามาก การแลกเปลี่ยนมีความชัดเจน: ผลผลิตต่อปริมาตรเครื่องปฏิกรณ์มากขึ้นเมื่อเทียบกับภาระของระบบที่มากขึ้น. ในขนาดที่ใหญ่ขึ้น การป้อนแบบแบทช์มักถูกจำกัดด้วยการสะสมของผลพลอยได้และการถ่ายโอนก๊าซ ในขณะที่การป้อนแบบเพอร์ฟิวชั่นมักถูกจำกัดด้วย การใช้สื่อ ความน่าเชื่อถือของระบบการกักเก็บ และระบบอัตโนมัติ. หากฉันกำลังคัดกรองสื่อ ตรวจสอบพฤติกรรมของเซลล์ หรือดำเนินการแคมเปญพัฒนาระยะสั้น ฉันจะเลือกใช้แบบแบทช์หรือเฟดแบทช์...

  • Nutrient Recovery from Cultivated Meat Byproducts

    การนำสารอาหารกลับมาใช้ใหม่จากผลพลอยได้ของเนื้อสัตว์เพาะเลี้ยง

    หากคุณดำเนินการพัฒนากระบวนการผลิตเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง การฟื้นฟูสารอาหารส่วนใหญ่เป็นคำถามเกี่ยวกับการเลือกสตรีม เป้าหมายความบริสุทธิ์ และการควบคุมการปล่อย ในแง่ที่ง่าย: สื่อที่ใช้แล้วมักจะยังคงมีกรดอะมิโน วิตามิน แร่ธาตุ และปัจจัยโปรตีนบางอย่างที่ยังไม่ได้ใช้; เศษชีวมวลมีโปรตีนและวัสดุภายในเซลล์; และแต่ละสตรีมต้องการเส้นทางการฟื้นฟูที่แตกต่างกันก่อนการนำกลับมาใช้ใหม่หรือการเบี่ยงเบน สำหรับ วิศวกรกระบวนการชีวภาพ นักวิทยาศาสตร์การเพาะเลี้ยงเซลล์ และ ทีมวิจัยและพัฒนาเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง, บทความนี้สรุปได้ดังนี้: แยกคำศัพท์ออกก่อน: การฟื้นฟูสารอาหารไม่เหมือนกับการรีไซเคิลสื่อ การใช้ร่วมผลิต หรือการบำบัดน้ำเสีย เริ่มต้นด้วยสตรีมที่สำคัญที่สุด: สื่อการขยายตัวและการแยกแยะที่ใช้แล้ว เศษซากการเก็บเกี่ยว และเศษเซลล์ เลือกเส้นทางการฟื้นฟูที่เบาที่สุดที่ตรงตามข้อกำหนด: การชี้แจง, ขั้นตอนเมมเบรน, การตกตะกอน, โครมาโตกราฟี,...

  • Downstream Processing: Biomass Purification Checklist

    การประมวลผลปลายน้ำ: รายการตรวจสอบการทำให้บริสุทธิ์ชีวมวล

    หากชีวมวลที่เก็บเกี่ยวของคุณไม่ได้ถูกกำหนดไว้ รถไฟสายปลายน้ำของคุณก็หลุดออกจากรางแล้ว สำหรับทีมเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง งานหลักนั้นง่าย: กู้คืน เซลล์ทั้งหมด, กลุ่มเซลล์, หรือชีวมวลที่มีโครงสร้าง ด้วยความเสียหายน้อย, ลดสื่อที่เหลือ, โปรตีน, DNA, และเศษซากให้ถึงขีดจำกัดระดับอาหาร และปล่อยเฉพาะวัสดุที่ยังคงอยู่ในสเปคจากการเก็บเกี่ยวจนถึงการถือครองสุดท้าย ฉันจะสรุปรายการตรวจสอบนี้ให้เหลือสี่ประตูผ่าน: ตั้งเป้าหมายผลิตภัณฑ์ก่อน: เซลล์ทั้งหมด, กลุ่มเซลล์, และชีวมวลที่มีโครงสร้างไม่ทนต่อการตั้งค่าการแยกหรือแรงเฉือนเดียวกัน เลือกขั้นตอนการทำให้ชัดเจนน้อยที่สุดที่ยังคงตอบสนองการผลิต: การหมุนเหวี่ยงย้อนกลับ, การกรองลึก, การกรองระดับไมโคร/TFF, และการหมุนเหวี่ยงความเร็วสูงแต่ละอย่างมีการแลกเปลี่ยนแรงเฉือน, พื้นที่, ภาระการทำความสะอาด, และความเหมาะสมของขนาด กำหนดจุดสิ้นสุดที่วัดได้ก่อนการดำเนินการ: ค่า pH,...

  • Reusable vs Single-Use Cold Chain Packaging

    บรรจุภัณฑ์โซ่ความเย็นแบบใช้ซ้ำเทียบกับแบบใช้ครั้งเดียว

    หากฉันกำลังเคลื่อนย้าย เนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยงในสหราชอาณาจักร, การเลือกบรรจุภัณฑ์มักจะง่าย: บรรจุภัณฑ์ที่ใช้ซ้ำได้เหมาะกับเส้นทางปิดที่มีการทำซ้ำและมีการคืนสินค้าที่เชื่อถือได้; บรรจุภัณฑ์ใช้ครั้งเดียวเหมาะกับเส้นทางเปิด, ทางเดียว, หรือเส้นทางที่ไม่สม่ำเสมอ. สำหรับวิศวกรกระบวนการชีวภาพ, นักวิทยาศาสตร์การเพาะเลี้ยงเซลล์, และทีมวิจัยและพัฒนาเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง, การตัดสินใจไม่ได้เกี่ยวกับค่าใช้จ่ายของบรรจุภัณฑ์เท่านั้น ฉันจะตรวจสอบ สามสิ่งก่อน: การควบคุมเส้นทาง, การรักษาอุณหภูมิสำหรับช่วงเวลาการขนส่งทั้งหมด, และ สิ่งที่เกิดขึ้นหลังการส่งมอบ. หากสินค้าว่างเปล่าไม่กลับมา, โมเดลที่ใช้ซ้ำได้อาจล้มเหลวอย่างรวดเร็ว หากบรรจุภัณฑ์ทางเดียวถูกใช้ซ้ำแล้วซ้ำอีก, ภาระขยะและการกำจัดจะสะสมอย่างรวดเร็วเช่นกัน. การเปรียบเทียบนี้มุ่งเน้นที่ บรรจุภัณฑ์การกระจายหลังการประมวลผล เท่านั้น.มันครอบคลุม: ระบบที่ใช้ซ้ำได้: ภาชนะเก็บความเย็นที่ทนทาน มักมี ฉนวน VIP, การเก็บคืน...

  • Real-Time Cell Monitoring: Optical Transparency Challenges

    การตรวจสอบเซลล์แบบเรียลไทม์: ความท้าทายด้านความโปร่งใสทางแสง

    หากฉันไม่สามารถมองผ่านโครงสร้างได้ ฉันไม่สามารถเชื่อถือการอ่านค่าได้ ในเนื้อสัตว์ที่เพาะเลี้ยง การตรวจสอบด้วยแสงมักล้มเหลวด้วยเหตุผลง่ายๆ สองประการ: การกระเจิงของแสง และ ความไม่ตรงกันของดัชนีหักเห. เมื่อโครงสร้างเคลื่อนจากชั้นบางไปยัง 1–10 มม. เนื้อเยื่อ 3 มิติ ข้อจำกัดเหล่านั้นจะลดความลึกของภาพ ทำให้โครงสร้างภายในเบลอ และซ่อนการเปลี่ยนแปลงในความมีชีวิต การจัดแนว และการสะสมของ ECM นี่คือเวอร์ชันสั้น: โครงสร้างบางและใส เป็นสิ่งที่ง่ายที่สุดในการถ่ายภาพด้วย กล้องจุลทรรศน์แบบ widefield หรือ confocal โครงสร้าง 3D ที่หนาขึ้น...

เปรียบเทียบ /15