Non-Animal Scaffolds Under Heat and pH Stress
For cultivated meat R&D teams, I assess scaffold stability by retained function - not appearance. Test your formulation through its actual heating, cooling and pH sequence. For adherent culture, check...
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Defined Bioscience | SKU:
<tc>Defined Bioscience</tc> FGF2-G3 成長因子（ヒト）
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FGF2-G3で使用された公開された研究は何ですか
Cellag Bioで使用されたコンポーネント FGF2-G3, と
DMEM/F12Cellag Bio研究の2 の1 で使用
FBSCellag Bio研究の2 の1 で使用
カプリコーンサイエンティフィック ウシ胎児血清（FBS）
InsulinCellag Bio研究の2 の1 で使用
これらの研究でも使用されていますが、現在 <tc>Cellbase</tc>にはありません: Albumin, Corn starch, DL-Alanine. これらの調達を依頼する →
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これらはCellag Bio. で発表された研究からのものです。これらの研究が使用したコンポーネントを示しており、これらの正確な製品ではありません。結果はお客様のシステムで異なる場合があります。
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ライセンス
生細胞の国境を越えた出荷には、あなたの国で輸入許可が必要になる場合があります。出荷前に、供給業者が目的地の正確な要件を確認します。
サポート
サポート
購入には、完全な技術文書（CoAs、マニュアル、またはプロトコル）が自動的に提供されます。Defined Bioscience からの直接的なアプリケーションサポートが含まれており、成功した実装を保証します。
支払い
支払い
購入注文も受け付けています。チェックアウト時に銀行振込を選択し、注文メモまたはメールでPO番号を提供してください。sales@cellbase.com
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現地の関税 & 税金は該当する場合に支払われます。
カード支払いは即時に処理されます。銀行振込とPO注文は支払いの受領後に処理されます。
法務
法務
ほとんどの製品には追加の契約は必要ありません。細胞株や特定の生物材料は、各サプライヤーからの初回購入時に材料移転契約（MTA） が必要です。これをデジタルで処理し、両者が出荷前にオンラインで署名します。同じサプライヤーからのその後の注文は即座に進行します。
FGF2-G3の配列は、9つのアミノ酸位置で標準的なヒトFGF2と異なり、生理的条件下でのタンパク質の安定性と活性を向上させています。これは、増殖アッセイにおいて高い効力を確認するED₅₀が1 ng/mL未満であり、通常、HiDef B8などのメディア調製において野生型FGF2の半分未満の濃度で必要とされます。再組換えにより E.coli およびSDS-PAGEによって95%以上純化されたFGF2-G3は、無菌の1 mg/mL液体または凍結乾燥粉末として供給され、柔軟な下流使用が可能です。
その延長された半減期により、週末の補充や毎日の培地交換が不要になり、より安定した均一な細胞集団を可能にします。FGF2-G3は、培養肉の研究およびパイロット生産のために、無血清または化学的に定義された培地に直接統合されます。
研究開発用のみ。人間または診断用途には使用できません。
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スケール互換性Production scale
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保存期間（月）
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保管温度
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検証状況
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製品滅菌方法
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コールドチェーンクラス
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混合後の安定性（最大日数）
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混合後の安定性（最小日数）
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動物由来成分なしはい
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バッファー添加物許可はい
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バッファーシステム
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化学的に定義はい
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濃度
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再濾過禁止はい
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グルコース（mg/L）
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解凍後すぐに混合はい
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最適化対象
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pH最大
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pH最小
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解凍後の安定性（最大日数）
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解凍後の安定性（最小日数）
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血清含有量
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無菌フィルターポアサイズ（µm）
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異種成分なしはい
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外観
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純度（%）
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研究用限定はい
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温度最大（°C）
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温度最小（°C）
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種
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細胞株特異性Avian, ボバイン, シーフード, 豚
FGF2-G3 を使用した公開研究
2の 143 Cellag Bio研究で使用されています。
これらの研究では、このコンポーネントが使用されましたが、必ずしもこの正確な製品ではありません。
- Low-cost food-grade alternatives for serum albumins in FBS-free cell culture media
- Enhancing food safety and cultivated meat production: exploring the impact of microplastics on fish muscle cell proliferation and differentiation
Cellag Bio, 培養肉研究の公開データベースからの研究。
Cellag Bioに関する研究記録を英語で開く。
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インサイト & ニュース
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LCA Data for Cultivated Meat Equipment Selection
For cultivated meat bioprocess engineers, I compare equipment impacts per 1 kg of usable finished product - not by rated power. I first compare bioreactor systems for process fit, food...
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Serum-Free Media Design for Myoblast Cell Lines
For myoblast culture teams, I would select a serum-free medium by two outcomes: viable cell expansion and retained myotube-forming capacity. Start with your cell line’s history and measurable acceptance limits...
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使用済み培地副産物の二次発酵
培養肉のR&Dチームにとって、私の基本ルールはシンプルです：接種前にバッチの組成と安全限界に基づいて使用済み培地を受け入れる、条件付けする、または拒否する, ことです - 元の培地レシピではありません。 二次発酵は残留栄養素を異なる生物に供給します。それは直接的な培地の再利用ではありません. Chlorella BDH-1 を用いた実験室作業はパイロットテストをサポートしますが、生産収量や資源節約を確立するものではありません。[1] 私はプロセスを**三つの原料ゲート - 組成、清澄化、滅菌 - **を通じて評価します。その後： ホスト、接種物、給餌モードを適格な原料に合わせます。 混合、酸素移動, 必要に応じた光の供給、排気の封じ込めを確認します。 複数のバッチにわたって収穫、製品品質、保持時間、廃棄物処理を検証します。 製品単位ごとのエネルギー、水、廃棄物を測定し、回収および拒否されたバッチを含めます。 私のリリースルール：<u>発酵の成功だけでは不十分です</u>. 意図された使用の安全性試験、バッチの追跡可能性、および適用される英国の規制経路の確認がまだ必要です。 使用済み培地の二次発酵：原料からリリースまで 原料の試験、調整、滅菌 接種前に、各バッチは3つのゲートを通過する必要があります：組成、明確化、滅菌. 原料の組成と受け入れ限界 使用済み培地の各バッチを、元の培地レシピではなく、意図された食品または飼料の使用に対してテストします。培養肉生産からの使用済み培地については、その使用のためのソース仕様に対してバッチを評価します。[5] 残留アミノ酸、糖類、その他の栄養素を測定します。[1][5] 病原体、ウイルス、カビ、酵母、マイコトキシン、生体アミン、重金属のテストを設定するために、ソースベースのハザード評価を使用します。[5] パラメータ 発酵効果 受け入れ、条件付きまたは拒否...
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安定した遺伝子発現のためのUCOEとcHS4の比較
培養肉のR&Dチーム向けには、初期の発現強度ではなく、測定された発現保持によってUCOEまたはcHS4を選択します。 独立したクローン間で保護されていないコントロールと一致する構造を比較します。4回の継代は初期のスクリーニングをサポートできますが、長期的な安定性を確立することはできません。 選択は、要素に何をさせたいかから始まります。UCOEはオープンクロマチンの維持を助け、cHS4はその配列と配置に応じてバリアおよびエンハンサー遮断活動を提供します。どちらもターゲットの一次または不死化細胞株. での安定した発現を保証するものではありません。 クイック比較 基準 UCOE cHS4 主な役割 クロマチンの開口によるサイレンシング抵抗 ヘテロクロマチンの拡散を制限またはエンハンサー入力をブロック 配置 通常プロモーターの上流 バリア保護のためのカセット境界に配置; エンハンサーとプロモーターの間にエンハンサーブロッキングのために配置 シーケンス負担 指定されたフラグメントに依存; 提案されたテストアームは約1.5–3.0 kbを追加 ペアのフルレングスフランクは約2.4 kb; ペア250 bpコアは約500 bp追加します 設計上の注意点 フラグメントの境界とプロモーター活性が重要です 短いコアはバリア保護が少ない可能性があります 発現保持、クローン間の変動、デリバリー、成長および生存率を一緒に追跡します。発現が低下した場合、サイレンシングによる損失と判断する前にカセットの完全性とコピー数を確認してください。 決定は構築物に依存します。 <u>最終設計を対象種および生産関連の培養条件</u>,...
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使用済み培地の再生：バッチ方式と連続方式
培養肉のプロセス開発を行う場合、選択は原則として簡単です：バッチはロットの分離を厳密にします; 連続は保持時間を短縮し、メディアの戻りをスムーズにします - ただし、ループ制御、分岐、汚れ管理が仕様内に収まる場合のみです。 記事を要約すると次のようになります： バッチ再生 は使用済み培地を別のロットとして扱います：収集、清澄、調整、試験を行い、再利用のためにリリースします。 連続再生 は使用済み培地をライブループで扱います：引き出し、清澄、調整、補充、監視を行い、ほぼリアルタイムで戻します。 決定は保持時間, 汚染拡散, センサー制御, 汚れリスク, ユーティリティプロファイル, 労働パターン, およびステージ適合. に基づきます。 灌流は再生ではありません。 灌流は培養液を移動させ、再生は除去された流れに適用される処理です。 ステージフィットの場合、分割は通常明確です：シードトレイン = バッチ, 高密度増殖 = 連続, 分化 = バッチまたは段階的ハイブリッド. 一つの明確な数値が際立っています：>3,000万細胞/mL, 深層ろ過...
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培養肉細胞株のノックアウト設計
ノックアウトが定義されたプロセス特性を改善しない場合、それは単なる編集であり、使用可能な細胞株ではありません。 バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、培養肉のR&Dチームにとって、この記事の主なポイントはシンプルです：ボトルネックから始め、編集前に合格/不合格の基準を設定し、次に低い倍加時間、懸濁成長、または表面抗原の除去などの測定可能な生産の読み出し を中心にワークフローを構築します。この記事はまた、プールレベルの編集データがガイドランキングに役立つが、リリースグレードのノックアウトにはクローンレベルの遺伝子型、タンパク質損失データ、系統チェック、およびマルチパッセージプロセステスト（しばしば一次細胞対不死化細胞株を含む）が必要であることを明確にしています。 2024年7月のIvy Farmのケースでは、豚および牛の筋芽細胞と脂肪由来幹細胞におけるNF2 ノックアウト が、倍加時間の短縮、懸濁培養のサポート、および系統マーカーの保持と関連付けられました。しかし、その記事はそれを普遍的なものとして扱っていません。編集されたクローンを進める前に、種、系統、およびターゲットに特化した検証がまだ必要です。 記事が指示すること: 編集目標をコストではなくプロセスの観点で定義する 成長、サスペンション適合性、マーカー保持、継代安定性の閾値を事前に設定する 経路の役割、系統効果、安全性に関連するリスクを確認した後にターゲット遺伝子を選択する 構成的コーディングエクソンに対するガイドを設計し、まずPCRとサンガーで親ローカスを確認する 編集者の露出時間を制限するために可能な限り RNPデリバリーを用いたドナーなしのワークフローを使用する バルクプールを初期スクリーニングとして扱い、ノックアウトの証明とはしない 二アレル欠失を確認し、その後タンパク質の欠如を確認する 一致する親またはCas9のみ、sgRNAなしのコントロールに対してクローンを検証する 4つの層を通過したラインのみをリリースする: 編集の同一性、分子の結果、細胞機能、生産適合性 いくつかの技術的なポイントが際立っています。この記事では、野生型SpCas9が3から5のミスマッチ, を許容できるため、オフターゲットのレビューを後回しにできないことを指摘しています。また、 17から18 bpの短縮ガイドがオフターゲット活性を500倍も削減でき、オンターゲット性能の低下がほとんどないことも指摘しています。そして、ドナーなしの修復では混合インデルが生じることが多いため、「編集済み」が「ヌル」を意味するとは限らない - フレーム内アレルが機能を保持する可能性がある. この記事が最も役立ったのは、その規律です。遺伝子型だけでは不十分であり、急成長だけでは不十分であり、1回の継代からの懸濁データだけでは不十分です。ノックアウトラインは、系統のアイデンティティを保持し、少なくとも四重複の継代で安定しており, 、生産で直面する同じ培養形式と密度で依然として機能する場合にのみ重要です。 それが記事の残りの部分のフレームです：ボトルネックから、デザインの編集、スクリーンのクローン、リリースの決定へと進み、それらのステップを混同しないようにします。 培養肉細胞株のための遺伝子ノックアウトワークフロー ターゲット遺伝子を選択し、適切な編集戦略を選ぶ...
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廃棄物システムの不確実性におけるTEAとLCAの比較
同じ培養肉の廃棄ルートを判断するためにTEA とLCA を使用する場合、異なる答えを期待するべきです。 それはモデリングの失敗ではありません。TEAは工場内のコストリスクをテストするため, 、LCAはライフサイクル全体の影響リスクをテストするために起こります。. バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、培養肉のR&Dチームにとって, 核心はシンプルです：同じ質量とエネルギーバランス, 、同じ廃棄経路, 、1 kgの食用製品を基準にすること - それぞれの方法が自分の役割を果たすようにします。 この記事を一度に読む: TEA は尋ねます: この廃棄ルートは£/kg、CAPEX、OPEX、損益分岐点にどのような影響を与えるのか? LCA は尋ねます: 同じルートがGHG排出量、水使用量、土地使用量、富栄養化、毒性にどのような影響を与えるのか? 廃棄物の選択 、例えば現場での処理、外部委託処分、メディア回収は、両方のモデルを同時にシフトさせることができます。 TEA, の主な拡散源には、メディアコスト、回収率、ユーティリティシステム設計, 処分費用、労働および政策の仮定. LCA, の主な拡散源には、電力ミックス、配分ルール、機能単位の選択、輸送距離、欠落しているインベントリデータ. 単一の仮定がLCAを大きく揺るがすことがあります: 記事は2.5対13を引用しています。電力ミックスの変更だけで製品1kgあたり5 kg CO₂-eq。...
