世界初の培養肉B2Bマーケットプレイス：発表を読む
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Opo Bio  |  SKU: Opo-Moo-A12

<tc>Opo Bio</tc> 牛アンガス前脂肪細胞

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これらの細胞を使用した公開された研究

Cellag Bioで使用された細胞のようなものに使用されるコンポーネント、および Cellbaseでそれらを見つける場所。

Cellag Bioの4 研究に基づいて

基礎培地

DMEM/F12Cellag Bio研究の4 の2 で使用
Product Image Gibco™ DMEM/F-12 Gibco · £35.00
その他のオプション (2) Gibco™ DMEM/F-12、HEPES Gibco™ DMEM/F-12、HEPES Gibco · £20.00 Product Image Gibco™ DMEM/F-12、HEPES、フェノールレッド無添加 Gibco · £20.00
DMEMCellag Bio研究の4 の1 で使用
Product Image Gibco™ DMEM、高グルコース Gibco · から £32.00
その他のオプション (2) Product Image Gibco™ DMEM、高グルコース、GlutaMAX™サプリメント、ピルビン酸 Gibco · £30.00 Product Image Gibco™ DMEM、高グルコース、ピルビン酸 Gibco · から £32.00

成長因子

FGF2Cellag Bio研究の4 の1 で使用
Product Image ウシFGF-ベーシック（FGF-2/bFGF）、動物由来成分フリー組換えタンパク質、PeproTech® Gibco · から £93.00
その他のオプション (2) <tc>Qkine</tc> 再組換えウシ/ブタFGF-2（145 Aa）タンパク質 Qkine 再組換えウシ/ブタFGF-2（145 Aa）タンパク質 Qkine · から £150.00 <tc>Defined Bioscience</tc> FGF2成長因子（鶏） Defined Bioscience FGF2成長因子（鶏） Defined Bioscience · から £68.00

サプリメント

これらの研究でも使用されていますが、現在 <tc>Cellbase</tc>にはありません: Alpha-ketoglutarate, Galactose, Glucose, Glutamate. これらの調達を依頼する →

Cellag Bioの7 研究に基づいて

サプリメント

InsulinCellag Bio研究の7 の3 で使用
<tc>XCeLL</tc> ファクター™ 再組換えヒトインスリン XCeLL ファクター™ 再組換えヒトインスリン XCeLL · から £225.00

これらの研究でも使用されていますが、現在 <tc>Cellbase</tc>にはありません: Dexamethasone, IBMX. これらの調達を依頼する →

これらを選ぶ方法

これらはCellag Bio. で発表された研究からのものです。これらの研究が使用したコンポーネントを示しており、これらの正確な製品ではありません。結果はお客様のシステムで異なる場合があります。 Cellbase にまだ掲載されていないコンポーネントは各セクションの最後に記載されています。各サプライヤーとの仕様と互換性を確認してください。

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Opo Bioから研究および生産施設へ直接世界中に発送します。

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該当する場合、現地の関税と税金が支払われます。

ライセンス

生細胞の国境を越えた出荷には、あなたの国で輸入許可が必要になる場合があります。出荷前に、供給業者が目的地の正確な要件を確認します。

サポート

購入には、完全な技術文書（CoAs、マニュアル、またはプロトコル）が自動的に提供されます。Opo Bio からの直接的なアプリケーションサポートが含まれており、成功した実装を保証します。

支払い

購入注文も受け付けています。チェックアウト時に銀行振込を選択し、注文メモまたはメールでPO番号を提供してください。sales@cellbase.com

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  • カード （安全な処理、即時履行）
  • 銀行振込 （チェックアウト時に見積請求書が発行されます）
  • 購入注文 （注文時またはメールでPO番号を提出してください）

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該当する場合、現地の関税と税金はお客様の負担となります。

カード支払いは即時に処理されます。銀行振込とPO注文は、支払いの受領後に処理されます。

法務

ほとんどの製品には追加の契約は必要ありません。細胞株や特定の生物材料は、各サプライヤーからの初回購入時に材料移転契約（MTA） が必要です。これをデジタルで処理します - 両者が出荷前にオンラインで署名します。同じサプライヤーからのその後の注文は即座に進行します。

Opo Bio 牛前脂肪前駆細胞株は、培養牛脂肪組織の開発に信頼性のある一次細胞源を提供します。成体アンガス脂肪組織から分離されたこれらの細胞は、プレミアムビーフのマーブリングと風味プロファイルに関する研究を支援するために、脂肪形成の可能性に基づいて選択されています。これらは冷凍供給され、安定した分化の可能性を維持し、脂肪組織工学の強固な基盤を提供します。

すべての株は接着性があり、脂肪形成マーカーの発現が確認されており、CD31陰性およびCD45陰性の特性評価を通じて確認されています。これらの細胞は脂肪組織の開発に関する研究のために供給されます。各バイアルには約120万の生存可能な細胞が含まれており、細菌、真菌、マイコプラズマに対して陰性であることが証明されています。ニュージーランドのドナーからの調達は、トレーサビリティとバイオセキュリティをサポートします。

Opo Bio は、ドナーの品種情報、脂質蓄積画像、特定の分化プロトコルを含む完全なドキュメントパックを各バイアルに提供します。技術サポートは、脂肪成熟および培地配合設計の支援を行います。

これらの製品は研究開発用のみです。人間や診断用途には使用できません。

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    For myoblast culture teams, I would select a serum-free medium by two outcomes: viable cell expansion and retained myotube-forming capacity. Start with your cell line’s history and measurable acceptance limits...

  • Secondary Fermentation of Spent Media Byproducts

    使用済み培地副産物の二次発酵

    培養肉のR&Dチームにとって、私の基本ルールはシンプルです：接種前にバッチの組成と安全限界に基づいて使用済み培地を受け入れる、条件付けする、または拒否する, ことです - 元の培地レシピではありません。 二次発酵は残留栄養素を異なる生物に供給します。それは直接的な培地の再利用ではありません. Chlorella BDH-1 を用いた実験室作業はパイロットテストをサポートしますが、生産収量や資源節約を確立するものではありません。[1] 私はプロセスを**三つの原料ゲート - 組成、清澄化、滅菌 - **を通じて評価します。その後： ホスト、接種物、給餌モードを適格な原料に合わせます。 混合、酸素移動, 必要に応じた光の供給、排気の封じ込めを確認します。 複数のバッチにわたって収穫、製品品質、保持時間、廃棄物処理を検証します。 製品単位ごとのエネルギー、水、廃棄物を測定し、回収および拒否されたバッチを含めます。 私のリリースルール：<u>発酵の成功だけでは不十分です</u>. 意図された使用の安全性試験、バッチの追跡可能性、および適用される英国の規制経路の確認がまだ必要です。 使用済み培地の二次発酵：原料からリリースまで 原料の試験、調整、滅菌 接種前に、各バッチは3つのゲートを通過する必要があります：組成、明確化、滅菌. 原料の組成と受け入れ限界 使用済み培地の各バッチを、元の培地レシピではなく、意図された食品または飼料の使用に対してテストします。培養肉生産からの使用済み培地については、その使用のためのソース仕様に対してバッチを評価します。[5] 残留アミノ酸、糖類、その他の栄養素を測定します。[1][5] 病原体、ウイルス、カビ、酵母、マイコトキシン、生体アミン、重金属のテストを設定するために、ソースベースのハザード評価を使用します。[5] パラメータ 発酵効果 受け入れ、条件付きまたは拒否...

  • UCOE vs cHS4 for Stable Gene Expression

    安定した遺伝子発現のためのUCOEとcHS4の比較

    培養肉のR&Dチーム向けには、初期の発現強度ではなく、測定された発現保持によってUCOEまたはcHS4を選択します。 独立したクローン間で保護されていないコントロールと一致する構造を比較します。4回の継代は初期のスクリーニングをサポートできますが、長期的な安定性を確立することはできません。 選択は、要素に何をさせたいかから始まります。UCOEはオープンクロマチンの維持を助け、cHS4はその配列と配置に応じてバリアおよびエンハンサー遮断活動を提供します。どちらもターゲットの一次または不死化細胞株. での安定した発現を保証するものではありません。 クイック比較 基準 UCOE cHS4 主な役割 クロマチンの開口によるサイレンシング抵抗 ヘテロクロマチンの拡散を制限またはエンハンサー入力をブロック 配置 通常プロモーターの上流 バリア保護のためのカセット境界に配置; エンハンサーとプロモーターの間にエンハンサーブロッキングのために配置 シーケンス負担 指定されたフラグメントに依存; 提案されたテストアームは約1.5–3.0 kbを追加 ペアのフルレングスフランクは約2.4 kb; ペア250 bpコアは約500 bp追加します 設計上の注意点 フラグメントの境界とプロモーター活性が重要です 短いコアはバリア保護が少ない可能性があります 発現保持、クローン間の変動、デリバリー、成長および生存率を一緒に追跡します。発現が低下した場合、サイレンシングによる損失と判断する前にカセットの完全性とコピー数を確認してください。 決定は構築物に依存します。 <u>最終設計を対象種および生産関連の培養条件</u>,...

  • Spent Media Regeneration: Batch vs Continuous Routes

    使用済み培地の再生：バッチ方式と連続方式

    培養肉のプロセス開発を行う場合、選択は原則として簡単です：バッチはロットの分離を厳密にします; 連続は保持時間を短縮し、メディアの戻りをスムーズにします - ただし、ループ制御、分岐、汚れ管理が仕様内に収まる場合のみです。 記事を要約すると次のようになります： バッチ再生 は使用済み培地を別のロットとして扱います：収集、清澄、調整、試験を行い、再利用のためにリリースします。 連続再生 は使用済み培地をライブループで扱います：引き出し、清澄、調整、補充、監視を行い、ほぼリアルタイムで戻します。 決定は保持時間, 汚染拡散, センサー制御, 汚れリスク, ユーティリティプロファイル, 労働パターン, およびステージ適合. に基づきます。 灌流は再生ではありません。 灌流は培養液を移動させ、再生は除去された流れに適用される処理です。 ステージフィットの場合、分割は通常明確です：シードトレイン = バッチ, 高密度増殖 = 連続, 分化 = バッチまたは段階的ハイブリッド. 一つの明確な数値が際立っています：>3,000万細胞/mL, 深層ろ過...

  • Gene Knockout Design for Cultivated Meat Cell Lines

    培養肉細胞株のノックアウト設計

    ノックアウトが定義されたプロセス特性を改善しない場合、それは単なる編集であり、使用可能な細胞株ではありません。 バイオプロセスエンジニア、細胞培養科学者、培養肉のR&Dチームにとって、この記事の主なポイントはシンプルです：ボトルネックから始め、編集前に合格/不合格の基準を設定し、次に低い倍加時間、懸濁成長、または表面抗原の除去などの測定可能な生産の読み出し を中心にワークフローを構築します。この記事はまた、プールレベルの編集データがガイドランキングに役立つが、リリースグレードのノックアウトにはクローンレベルの遺伝子型、タンパク質損失データ、系統チェック、およびマルチパッセージプロセステスト（しばしば一次細胞対不死化細胞株を含む）が必要であることを明確にしています。 2024年7月のIvy Farmのケースでは、豚および牛の筋芽細胞と脂肪由来幹細胞におけるNF2 ノックアウト が、倍加時間の短縮、懸濁培養のサポート、および系統マーカーの保持と関連付けられました。しかし、その記事はそれを普遍的なものとして扱っていません。編集されたクローンを進める前に、種、系統、およびターゲットに特化した検証がまだ必要です。 記事が指示すること: 編集目標をコストではなくプロセスの観点で定義する 成長、サスペンション適合性、マーカー保持、継代安定性の閾値を事前に設定する 経路の役割、系統効果、安全性に関連するリスクを確認した後にターゲット遺伝子を選択する 構成的コーディングエクソンに対するガイドを設計し、まずPCRとサンガーで親ローカスを確認する 編集者の露出時間を制限するために可能な限り RNPデリバリーを用いたドナーなしのワークフローを使用する バルクプールを初期スクリーニングとして扱い、ノックアウトの証明とはしない 二アレル欠失を確認し、その後タンパク質の欠如を確認する 一致する親またはCas9のみ、sgRNAなしのコントロールに対してクローンを検証する 4つの層を通過したラインのみをリリースする: 編集の同一性、分子の結果、細胞機能、生産適合性 いくつかの技術的なポイントが際立っています。この記事では、野生型SpCas9が3から5のミスマッチ, を許容できるため、オフターゲットのレビューを後回しにできないことを指摘しています。また、 17から18 bpの短縮ガイドがオフターゲット活性を500倍も削減でき、オンターゲット性能の低下がほとんどないことも指摘しています。そして、ドナーなしの修復では混合インデルが生じることが多いため、「編集済み」が「ヌル」を意味するとは限らない - フレーム内アレルが機能を保持する可能性がある. この記事が最も役立ったのは、その規律です。遺伝子型だけでは不十分であり、急成長だけでは不十分であり、1回の継代からの懸濁データだけでは不十分です。ノックアウトラインは、系統のアイデンティティを保持し、少なくとも四重複の継代で安定しており, 、生産で直面する同じ培養形式と密度で依然として機能する場合にのみ重要です。 それが記事の残りの部分のフレームです：ボトルネックから、デザインの編集、スクリーンのクローン、リリースの決定へと進み、それらのステップを混同しないようにします。 培養肉細胞株のための遺伝子ノックアウトワークフロー ターゲット遺伝子を選択し、適切な編集戦略を選ぶ...