世界初の培養肉B2Bマーケットプレイス: 発表を読む

バイオリアクターにおける代謝物プロファイリングのためのトップ5センサー

Top 5 Sensors for Metabolite Profiling in Bioreactors

David Bell |

バイオリアクター内のグルコース、乳酸、アンモニウムなどの代謝物をモニタリングすることは、効率的な培養肉生産に不可欠です。リアルタイムセンサーは栄養素レベルを正確に制御し、収量を向上させ、廃棄物を削減します。以下は、この目的に特化したトップ5のセンサー技術です:

  • ラマン分光法: 高精度で複数の代謝物を同時に追跡し、非接触モニタリングを提供します。
  • 2D-蛍光分光法: 内因性蛍光体を測定することで代謝の変化を検出し、栄養素と廃棄物の追跡を可能にします。
  • 近赤外線(NIR)分光法: 栄養素とバイオマスをリアルタイムで分析し、最適な細胞成長条件を維持するのに理想的です。
  • 電気化学バイオセンサー: グルコースや乳酸のような特定の代謝物を迅速かつターゲットを絞って検出します。
  • イオン選択性電界効果トランジスタ (ISFETs): pHとイオンを測定し、細胞活動と栄養プロファイルを直接監視します。

各センサーは、非接触オプションから直接媒体との相互作用まで、特定の生産ニーズに適した強みを持っています。これらの技術を組み合わせることで、予測精度を達成し、生産プロセスを合理化できます。

1. ラマン分光法

測定される主要代謝物

ラマン分光法は、グルコース, 乳酸, およびグリセロールを単一の読み取りで同時に測定することができます。これにより、エネルギー源、代謝副産物、および原料の同時追跡が可能になります。各化合物は独自のスペクトル署名を生成し、アミノ酸や有機酸を含む複雑な混合物でも正確な識別が可能です。

精度指標

グルコースモニタリングに関しては、インラインラマン分光法が0.1–40 g/Lの典型的な範囲内で0.2009 g/Lの予測標準誤差(SEP)を達成します。乳酸の場合、0.0–5.0 g/Lの範囲でSEPは0.1166 g/Lです[7]. 2024年7月、Biophotonics Diagnostics GmbHの研究者は、Wasatch Photonics 785 nmラマン分光計を使用してバイオプロセスをモニタリングしました。彼らは、主要製品のRMSEPが0.41 g/L、グリセロール原料のRMSEPが49時間サンプルで1.45 g/Lであると報告しました[6] . これらの結果は、動的バイオリアクター環境におけるラマン分光法の精度と信頼性を強調しています。

非侵襲的能力

ラマン分光法は多様な展開オプションを提供します。 測定は、無菌環境を維持しながらバイオリアクタービューポートを通じて非侵襲的に行うことができ、または特に高密度の培養肉培養に適したオートクレーブ可能な浸漬プローブを介して行うことができます。水に対する自然な不感症により、他の方法がしばしば干渉を受ける水性バイオプロセスに理想的です。現代のシステムは、迅速なスペクトル平均化を通じてほぼ瞬時のフィードバックを提供し、要求の厳しい条件下でも効果的なモニタリングを保証します。

培養肉バイオリアクターの主な利点

リアルタイムのフィードバックを提供する能力により、ラマン分光法は培養肉生産のスケールアップにおけるゲームチェンジャーとなります。オフラインHPLC, とは異なり、汚染のリスクなしに連続データを提供します。高い細胞濃度を持つ光学的に濃い媒体には、サファイアボールレンズを装備した浸漬プローブが推奨されます。これらのレンズは、約100 µmの短い作業距離を持ち、光の散乱を減少させ、困難な環境での正確な測定を可能にします。

2. 2D-蛍光分光法

測定される主要代謝物

2D-蛍光分光法は、様々な代謝物の独自の蛍光プロファイルを明らかにするEEMs(励起-発光マトリックス)を生成します。この方法は、NADH, トリプトファン, リボフラビン, およびピリドキシン. などの内因性蛍光体を直接検出します。化学計量モデルを適用することで、グルコース, 乳酸, アンモニウム, およびグルタミンの濃度を推定します。これらはすべて、培養肉バイオリアクターにおける細胞成長と代謝の追跡に重要です。各化合物は独自のスペクトルピークを持ち、無菌条件を維持しながら栄養素の使用と廃棄物の蓄積をリアルタイムで監視することができます。

精度指標

2022年6月、ラフバラー大学の研究者たちは、CHO細胞を用いた2Lバイオリアクターにおける2D蛍光分光法の能力を実証しました。カレン・クープマン博士の指導の下、グルタミンで0.29 mM、アンモニウムで0.72 mMのRMSEP値を120時間で達成しました。これにより、リアルタイムでの培地調整が可能となり、乳酸レベルを25%削減し、収量を18%増加させました。この技術の典型的なRMSE_CV値は、グルコースで0.15–0.35 mM、乳酸で0.12–0.28 mM、アンモニウムで0.08–0.22 mMの範囲です。クロスバリデーションの結果、マルチメタボライト部分最小二乗(PLS)モデルでR²値が0.95を超えることが示されています[1] .

非侵襲的能力

この技術の非侵襲的な性質は、バイオリアクターでのリアルタイムモニタリングにおける大きな利点です。それは、無菌状態が維持されるようにバイオリアクターポートを通して挿入される光ファイバープローブを使用します。これらのプローブは135°Cで滅菌され、GMP環境で再利用可能です。システムは5~10分ごとにフルスペクトルをキャプチャし、応答時間は1分未満です。これにより、培養肉生産におけるプロセス最適化のための優れたツールとなります[3] .

培養肉バイオリアクターの主な利点

2D蛍光分光法は、複数の代謝物を同時に追跡するための卓越した感度を提供します。その速度と精度は、培養肉生産のためのバイオプロセス監視における一般的な課題に対処します。例えば、2023年9月にNcardiaは、iPSC-心筋細胞生産のために5LバイオリアクターにBioView 2D蛍光分光法を組み込みました。このシステムは、12%の誤差範囲で生存細胞密度を予測し、乳酸測定でR²が0.97を達成しました。ロバート・パシエ博士が率いるプロジェクトは、7日間の運用で30%速い最適化プロセスを達成しました。この技術は、フィードバッチ最適化のためのプロセス分析技術(PAT)をサポートし、筋細胞培養における収率を20〜30%向上させます。[4]. さらに、Cellbaseのようなプラットフォームは、培養肉産業の専門家と2D蛍光センサーやバイオリアクタープローブの供給者をつなぎ、正確なプロセス制御を可能にするツールへのアクセスを確保します。

3. 近赤外線(NIR)分光法

測定される主要代謝物

近赤外線(NIR)分光法は、グルコース、グルタミン、乳酸、アンモニアなどの重要な代謝物のリアルタイム追跡において重要な役割を果たします。これらは培養肉の成功した成長に不可欠な要素です。また、基線スペクトルデータと光散乱を分析することで、pHレベルや生存細胞密度を予測するのにも役立ちます。 FT-NIR(フーリエ変換近赤外)を使用することで、この方法は非常に少量の化合物に対しても正確な化学分析を提供します。アンモニアレベルの監視は特に重要であり、過剰なアンモニアはタンパク質の糖鎖付加を妨げ、細胞の健康を害する可能性があります[9].

精度指標

2008年3月に、ユタ州ローガンのサーモフィッシャーサイエンティフィックの研究者たちは、Thermo Scientific Antaris FT-NIRアナライザーの能力を実証しました。彼らは10 Lの撹拌タンクバイオリアクターに含まれるHEK293細胞. を監視するために使用しました。スペクトルデータは11日間にわたり毎時収集され、相関係数が0.926から0.995の範囲で6つの重要な成分の予測を可能にしました。例えば、グルコース測定はRMSECV(交差検証の二乗平均平方根誤差)0.14 g/Lを達成し、乳酸測定は0.11 g/Lに達しました。生存細胞密度は強い相関を示しました(R = 0.989) 0.0から9.0 × 10⁶ cells/mLの範囲で。また、pHレベルは6.7から7.3の範囲でRMSECVが0.02で監視されました[9]. これらの指標は、非侵襲的かつ正確な監視のための方法の信頼性を強調しています。

非侵襲的能力

再循環ループと光学フローセルを含むNIR分光法のオンライン監視セットアップは、汚染のリスクを大幅に低減します。このセットアップにより、栄養供給と廃棄物管理の即時調整が可能になり、有害な副産物の蓄積による反応性能の低下や細胞死などの問題を回避するのに役立ちます[9].

培養肉バイオリアクターの主な利点

NIR分光法は、バイオプロセスのパフォーマンスをリアルタイムで包括的に把握します。広いスペクトル範囲(4,000 cm⁻¹から10,000 cm⁻¹)をカバーすることで、栄養素、廃棄物、物理的な細胞特性を同時に分析します。これにより、プロセス分析技術(PAT)の重要な部分となり、継続的なデータフィードバックを通じて正確な環境条件が維持されることを保証します。 Cellbaseのようなプラットフォームは、培養肉の専門家とNIR分光法およびバイオリアクターモニタリングシステムのサプライヤーを結びつけ、詳細な多成分分析に必要な基本的なツールを提供します。これは、培養肉のバイオプロセスを監視するために不可欠な機能です。[9].

4. 電気化学バイオセンサー

測定される主要代謝物

電気化学バイオセンサーは、培養肉バイオリアクターでのリアルタイムモニタリングにおいて貴重なツールです。これらのデバイスは、グルコースや乳酸などの生産プロセスに不可欠な重要な代謝物を追跡します。彼らは、グルコースオキシダーゼ酵素、抗体、または分子インプリントポリマー(MIP)などの特殊なバイオレコグニションエージェントを使用して、ターゲット代謝物に特異的に結合することでこれを達成します。一部の高度なシステムは、必須アミノ酸やビタミンの微量を検出することもでき、栄養レベルの詳細な画像を提供します。

精度指標

これらのバイオセンサーの性能は、感度(μA/mMで表される)、線形相関係数(R²)、および検出限界(LOD)などの指標を使用して評価されます。例えば、2013年の研究では、乳酸オキシダーゼと多層カーボンナノチューブを組み込んだ表皮タトゥーセンサーが紹介されました。10人の健康なボランティアにサイクリング中にテストしたところ、センサーは1–20 mmol/Lの範囲の乳酸レベルに対して線形応答を示し、運動強度の変化に対する応答の遅れは見られませんでした[12]. 別の重要な指標である選択性係数は、干渉物質の存在下でセンサーが精度を維持する能力を測定します。これは、バイオリアクターメディアの複雑な環境において重要な要素です。これらのセンサーは非常に適応性が高く、さまざまな用途に適しています。

侵襲的または非侵襲的な能力

電気化学的バイオセンサーは、侵襲的および非侵襲的な設定の両方で動作できます。例えば、2022年8月にカリフォルニア工科大学のWei Gaoのチームによって開発された「NutriTrek」パッチは、MIPで強化されたレーザー刻印グラフェン電極を使用しています。臨床試験では、このパッチが運動中および食事後のアミノ酸レベルをリアルタイムで追跡できることが示され、汗の濃度が血清レベルと非常に一致していることが確認されました [10][11]. バイオリアクターの設定では、これらのセンサーを培養培地に直接統合するか、再循環ループに配置して、汚染リスクを低減しながら継続的なモニタリングを確保できます。この二重機能により、さまざまな用途に対して非常に汎用性があります。

培養肉バイオリアクターの主な利点

培養肉生産における電気化学バイオセンサーの際立った利点の一つは、アミノ酸やビタミンを非侵襲的にモニタリングできることです。この機能により、高価な培地成分の使用を最適化し、サンプリングによる汚染を避けることができます。ある研究では、この可能性を強調しています:

「電気化学センサーは、高感度、精度、特異性、低検出限界を提供し、小型化が可能で、コスト効率が高く、ユーザーが操作しやすいため、POCTシステムへの統合に強い可能性を持っています。" - バイオデザインと製造 [12]

さらに、現場再生能力を備えた高度なセンサーは、センサーの汚染を防ぐことで、時間の経過とともにその性能を維持します [10][11]. プラットフォームのような Cellbase は、培養肉の生産者とこれらのバイオセンサーの供給者を結びつけ、代謝物の正確なリアルタイムモニタリングのための信頼できる技術へのアクセスを確保します。

5. イオン選択性電界効果トランジスタ (ISFETs)

測定される主要代謝物

ISFETsは、イオン濃度の変化をしきい値電圧の変調を使用して電気信号に変換することによって機能します。特にpH(H⁺イオン)、グルコース、およびカリウム(K⁺)、ナトリウム(Na⁺)、カルシウム(Ca²⁺)などの主要な電解質の測定に効果的です。これらに加えて、細胞活動の直接的な結果である溶解したCO₂によって引き起こされるpHの変化を検出することで、細胞呼吸の監視に役立ちます。さらに、ISFETはタンパク質(抗原/抗体)や酵素駆動の反応生成物を測定することができ、培養肉バイオリアクターにおける成長因子や特定の代謝プロセスの追跡に非常に貴重です。このリアルタイムで正確な監視は、培養肉生産の要求に完全に一致します。

精度指標

ISFETは、その卓越した感度と低検出限界で知られており、バイオプロセスの厳密な制御を可能にします。例えば、10⁻⁸ Mの低濃度のグルコースや、同様の精度でカリウムイオンを検出することができます。バイオ分子に関しては、10⁻¹⁴ g/mLの低濃度のタンパク質や、10⁻¹⁵ MのDNAを識別することができます。その迅速な応答時間と高感度は、バイオリアクター内の絶えず変化する条件に理想的です。しかし、これらにはいくつかの制限があり、信号ドリフト、温度変化に対する感度、動的範囲の制限が含まれます。[13]

侵襲的または非侵襲的な能力

ISFETは、メディアに直接接触してインラインで動作するように設計されており、汚染のリスクなしに継続的なモニタリングを可能にします。CMOS技術との互換性と小型化のおかげで、細胞とセンサーゲートの間のナノギャップでのpH変化を検出することにより、細胞呼吸と代謝活動をリアルタイムで追跡できます。例えば、Wangの研究チームは、デュアルゲートISFETとIn₂O₃ナノベルトを使用した携帯型診断装置を開発し、心筋トロポニンIの検出範囲をわずか20分で1から1,000 pg/mLに達成しました。[13]

培養肉バイオリアクターの主な利点

ISFETは、CMOS技術との統合により培養肉生産において大きな利点を提供します。これにより、極端な小型化、高スループットセンサーアレイ、シームレスなデジタル信号処理が可能になります。Journal of Materials Chemistry B:

で指摘されているように、

"ISFETは、従来の三電極システムとは異なり、ターゲット検出に単一の参照電極のみを必要とすることで、機器設計を合理化します。" [13]

その全固体設計により、酸やアルカリを含む過酷な化学環境でも耐久性が保証されます。さらに、ISFETをCMOSアレイに組み込む能力は、培養肉バイオリアクターで必要とされる複雑な栄養プロファイルを管理するために不可欠な多数のパラメータを同時に監視することを可能にします。これらの機能により、ISFETはこの分野での正確でリアルタイムの代謝物追跡に不可欠なツールとなります。 Cellbaseは培養肉生産者とISFET供給者を結びつけ、最適化された生産のためにこれらの堅牢でスケーラブルなセンサーへのアクセスを確保します。

バイオリアクター用バイオセンサー: グルコース、pH、乳酸、酸素

センサー比較表

Comparison of Top 5 Metabolite Sensors for Cultivated Meat Bioreactors

培養肉バイオリアクター用トップ5代謝物センサーの比較

培養肉生産に適したセンサーの選択は、ターゲット代謝物、侵襲性のレベル、および特定のプロセスパラメータに依存します。以下の表は、主要なセンサー技術を要約したもので、この分野における性能特性と利点に焦点を当てています。

センサータイプ 主要代謝物/パラメータ 精度 & 信頼性 操作モード 培養肉の利点
ラマン分光法 グルコース、乳酸、グルタミン、アンモニウム、アミノ酸、タンパク質 高い; 精度にはMVDAモデルが必要 非侵襲的(インライン) 細胞分化とタンパク質の完全性を監視
2D-蛍光分光法 酸化還元状態、細胞機能 代謝変化に対する高感度 非侵襲的(インライン) 代謝健康と細胞ストレスを追跡
NIR分光法 総バイオマス、一般的な代謝物バイオマスに対して高い; 代謝物に対して開発中 非侵襲的(インライン) サンプリングなしでリアルタイムのバイオマス予測
電気化学バイオセンサー グルコース、乳酸、グルタミン酸、アンモニア 高い; 特定のターゲットの迅速なプロファイリング 侵襲的(インシチュープローブ) 自動給餌ループをサポート
ISFETs(FETバイオセンサー) pH、イオン、タンパク質、生/死細胞形態 高感度; 新興技術 侵襲的(電子チップ) 生存細胞と非生存細胞を区別

ラマンやNIR分光法などの非侵襲的光学センサーは、培養媒体と物理的に接触する必要がないため、無菌性を維持するのに特に適しています。これは、培養肉細胞の壊れやすい性質にとって重要です。一方、電気化学バイオセンサーやISFETのような侵襲型センサーは、直接的な媒体との相互作用を提供し、正確でリアルタイムのデータを提供します。しかし、これらは正確さと衛生を確保するために厳格な滅菌プロトコルを必要とします。

SartoriusのプロセステクノロジーマネージャーであるDavid Edeは、ラマン分光法の適応性を強調しています:

"ラマン分光法は、グルタミン、アンモニウム、アミノ酸、さらにはタンパク質を含む多くの異なる分析物の濃度測定に適応されています。" [14]

この適応性により、ラマン分光法は単一のセンサーを使用した詳細な代謝物プロファイリングにおいて際立った選択肢となります。

Cellbaseは、培養肉生産者と、この専門業界向けに設計された信頼できるセンサーサプライヤーをつなぐ架け橋として機能します。

結論

精密な代謝物モニタリングは、先に述べた詳細なセンサープロファイルで強調されているように、培養肉生産におけるゲームチェンジャーです。ラマン分光法、2D蛍光分光法、NIR分光法、電気化学バイオセンサー、ISFET などの技術は、特定のバイオプロセスの課題に取り組んでいます。センサーを装備したバイオリアクターは、手動システムを大幅に上回り、85–90%のメディア利用効率を達成し、わずか60%に比べて生産サイクルを25%短縮し、バッチのばらつきを20–30%削減します[15] [5] . これらの進歩は、バイオプロセスの最適化における課題に直接対応しています。

これらの利点を完全に実現するためには、センサーの能力を特定の生産ニーズに合わせることが重要です。例えば、ラマンおよびNIRは、無菌で非接触のモニタリングが重要な100リットル以上の大規模バイオリアクターに理想的です。一方、電気化学的バイオセンサーは、迅速な代謝物検出を必要とするポータブルなインラインアプリケーションにより適しています。専門家は、ラマンとISFETのような複数のセンサーを組み合わせることで、代謝変化に対して95%の予測精度を達成し、研究と商業規模の生産のギャップを埋めることができると発見しました[2][4] . このカスタマイズされたアプローチにより、効率的なプロセス調整とより一貫した生産結果が可能になります。

適切なセンサー戦略を採用するには、主要な代謝物をターゲットにし、厳格な滅菌基準を維持し、迅速な応答時間を確保し、既存のバイオリアクターにセンサーをシームレスに統合することが含まれます。リアルタイム代謝物プロファイリングは、自動給餌システムとタイムリーな廃棄物除去をサポートし、最大10⁸細胞/mLの細胞密度を可能にし、収量を15–25%向上させます [8][2].

ラマンプローブ、NIRシステム、バイオセンサー、またはバイオリアクター統合ISFETの信頼できるサプライヤーを探している培養肉生産者向けに、Cellbase は専用のB2Bマーケットプレイスを提供します。キュレーションされたリストと透明な調達を提供することで、プラットフォームは調達の意思決定を簡素化し、培養肉生産の専門的な要件に適合することを保証します。

よくある質問

どのセンサーが私のターゲット代謝物(グルコース、乳酸、アンモニウム、グルタミン)に最適ですか?

培養肉バイオリアクターでグルコース、乳酸、アンモニウム、グルタミンをモニターするには、センサーの選択は主にプロセス要件に依存します。 グルコースと乳酸の場合、酵素バイオセンサーまたは分光法が効果的です。一方、イオン選択性電極または光学センサー はアンモニウムとグルタミンの追跡に適しています。特定のアプリケーションとバイオリアクターの設定を評価して、最も適切なオプションを決定してください。

非侵襲センサーが必要ですか、それとも無菌性を損なうことなくインラインプローブを使用できますか?

バイオリアクターを使用した培養肉の生産では、インラインプローブ 非侵襲センサーの選択は、無菌性の要件と特定の生産目標に依存します。

  • インラインプローブ ( e.g. , RTDs および pH 電極) は、適切に滅菌および維持されている場合、信頼性の高いツールです。直接測定を提供しますが、無菌性を確保するために慎重な取り扱いが必要です。
  • 非侵襲センサー, 例えば分光センサーは、培養と直接接触しないことで代替手段を提供します。このアプローチは無菌性を維持し、汚染のリスクを低減します。

最終的には、適切な選択肢はバイオリアクターの設計とプロセスが要求するモニタリングの種類に依存します。

バイオリアクターで予測精度を向上させるために複数のセンサーをどのように組み合わせますか?

さまざまなセンサーを組み合わせることで、重要なパラメータの徹底的な評価を提供し、予測精度を向上させます。pH電極, 溶存酸素センサー, ラマン分析装置, および静電容量センサーを一緒に使用することで、バイオリアクターの状態を詳細に理解することができます。 自動化システムは、AIや高度な分析を用いてこのリアルタイムデータを分析し、pHレベル、酸素の利用可能性、細胞の健康状態などの重要な要素を正確に管理します。これらの要素は、培養肉の生産を拡大するために重要です。

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Author David Bell

About the Author

David Bell is the founder of Cultigen Group (parent of Cellbase) and contributing author on all the latest news. With over 25 years in business, founding & exiting several technology startups, he started Cultigen Group in anticipation of the coming regulatory approvals needed for this industry to blossom.

David has been a vegan since 2012 and so finds the space fascinating and fitting to be involved in... "It's exciting to envisage a future in which anyone can eat meat, whilst maintaining the morals around animal cruelty which first shifted my focus all those years ago"