Serumfri medier omformer produktionen af dyrket kød ved at erstatte føtalt bovint serum (FBS) med definerede, dyrefri formuleringer. Dette skift adresserer omkostnings-, etiske og regulatoriske udfordringer, samtidig med at det forbedrer konsistens og skalerbarhed. Nøglestrategier inkluderer:
- Omkostningsreduktion: Fødevarekvalitets basalmedier reducerer omkostningerne med op til 82% i skala.
- Skræddersyede formuleringer: Næringsbehov varierer efter art, celletype og vækstfase (proliferation vs differentiering).
- Vækstfaktorer: Komponenter som FGF2, insulin og selen understøtter cellevækst og levedygtighed.
- Ammoniak kontrol: Alternativer til glutamin forhindrer metaboliske hæmmere.
-
Indkøb: Platforme som
Cellbase forenkler indkøb af mediekomponenter.
Præcisionsteknikker, såsom metabolomik og Design of Experiments (DOE), optimerer formuleringer for bedre cellevækst og differentiering. Dette gør produktionen af dyrket kød mere effektiv og skalerbar, samtidig med at strenge fødevaresikkerhedsstandarder overholdes.
Dr. Peter Stogios: Lavpris vækstfaktorer til serumfrit medie
Kernekomponenter i serumfrit medie
At skabe effektive serumfrie medier kræver omhyggelig opmærksomhed på hver komponents rolle. Disse formuleringer kombinerer typisk et basismedium med præcist udvalgte tilskud, der sikrer, at cellerne modtager de nødvendige næringsstoffer til vækst og differentiering - nøgletrin i produktionen af dyrket kød.
Basismedier og næringsstofkategorier
Kernen i enhver serumfri formulering er basismediet, som leverer essentielle næringsstoffer som glukose, aminosyrer, vitaminer og pH-bufferstoffer. Disse er fundamentale for cellulær metabolisme.Blandt de almindeligt anvendte basale medier skiller DMEM/F-12 sig ud. Det kombinerer næringsrigdommen fra DMEM med den mangfoldige sammensætning af Ham's F12, hvilket gør det velegnet til den brede vifte af celletyper, der anvendes i produktionen af dyrket kød [2]. En anden mulighed er Ham's F10, som har vist sig effektiv i formuleringer, der erstatter føtalt bovint serum med definerede komponenter [2].
Glukose fungerer som den primære energikilde, med koncentrationer, der typisk varierer fra 0 til 5 g/L, afhængigt af cellelinjens metaboliske behov. For eksempel fandt forskning på CHO-celler, at optimering af glukose ved 1,4 g/L resulterede i et maksimalt rekombinant proteinudbytte på 3,5 g/L [3]. Aminosyrer og vitaminer er lige så kritiske - aminosyrer fungerer som byggesten for proteiner og energimetabolisme, mens vitaminer fungerer som kofaktorer i enzymatiske processer.
At opretholde en optimal pH er afgørende, opnået gennem buffersystemer, der stabiliserer cellulær funktion og forhindrer metaboliske forstyrrelser. Sporelementer som jern, magnesium, calcium og zink er uundværlige som kofaktorer for enzymer og i cellulær signalering. Chelaterende midler som EDTA regulerer disse metalioner, forhindrer dannelsen af reaktive iltarter og understøtter enzymaktivitet [4].
En udfordring i serumfrie formuleringer er håndtering af ammoniak, en væksthæmmer produceret under glutaminmetabolisme. For at imødegå dette udviklede forskere som Hubalek og kolleger et serumfrit medium, der erstatter GlutaMAX med ikke-ammoniak-producerende forbindelser som α-ketoglutarat, glutamat og pyruvat. Denne innovation opretholdt ikke kun sammenlignelig kortsigtet cellevækst uden ammoniakophobning, men forbedrede også den adipogene kapacitet af fibro-adipogene progenitorer med 2,1 gange [2].Disse grundlæggende næringsstoffer danner grundlaget for det næste lag af tilskud.
Vækstfaktorer og rekombinante proteiner
Når de grundlæggende næringsstoffer er optimeret, introduceres vækstfaktorer for at finjustere de serumfrie formuleringer. Disse molekyler binder sig til celleoverfladereceptorer og aktiverer signalveje, der fremmer celledeling, overlevelse og metabolisk funktion. Blandt disse er Fibroblast Vækstfaktor 2 (FGF2) bredt anvendt på grund af dens evne til at fremme celleproliferation og opretholde levedygtighed. Afhængigt af celletype og ønsket resultat kan yderligere faktorer som Transformerende Vækstfaktor og Epidermal Vækstfaktor også inkorporeres [2].
Andre kritiske komponenter inkluderer insulin, transferrin og selen. Insulin spiller en dobbelt rolle som en metabolisk regulator og en vækstfremmer.Transferrin er essentiel for jerntransport og DNA-syntese, mens selen fungerer som en kofaktor for antioxidant enzymer, der beskytter celler mod oxidativ skade. Brug af definerede koncentrationer af disse komponenter forbedrer konsistensen og minimerer batch-til-batch variation [3].
Bærerproteiner som bovint serumalbumin (BSA) og rekombinant albumin spiller også en afgørende rolle. De transporterer lipofile hormoner og vækstfaktorer, buffer pH, og beskytter sarte proteiner mod denaturering. Mens BSA er et bevist supplement til cellevækst - især i CHO cellekulturer - tilbyder rekombinant albumin lignende fordele uden at være afhængig af materialer af animalsk oprindelse. Dette forbedrer ikke kun konsistensen, men adresserer også regulatoriske bekymringer knyttet til produktion af dyrket kød [2][3]. Valg af det rigtige bærerprotein involverer ofte en balance mellem omkostninger, ydeevne og bæredygtighedsmål.
Fremskridt inden for omics og transkriptomik hjælper nu med at identificere de unikke næringsbehov for specifikke celletyper. Denne datadrevne tilgang baner vejen for mere omkostningseffektive og effektive formuleringer, der driver produktionen af dyrket kød ind i en ny æra af præcision og skalerbarhed.
Optimering af medier til celleproliferation og differentiering
Design af serumfrie medier, der opfylder de specifikke behov i hver vækstfase, kræver omhyggelig opmærksomhed på cellernes skiftende næringskrav. I stedet for at holde sig til én formel gennem hele dyrkningsprocessen, finder forskere, at skræddersyede medier til hver fase giver bedre resultater.
Krav til proliferationsfasen
Under proliferationsfasen er fokus på at opnå hurtig og vedvarende cellevækst. Næringsblandingen skal understøtte aktiv metabolisme, DNA-syntese og hyppig celledeling.Nøgletilskud som insulin, transferrin og selen bruges bredt til at øge proliferationsraterne på tværs af forskellige celletyper [3].
Glukose spiller en kritisk rolle i denne fase. Koncentrationen skal balanceres omhyggeligt - for lidt begrænser energitilgængeligheden, mens for meget kan føre til ophobning af laktat og metabolisk stress.
En anden udfordring er at håndtere ammoniakniveauer. Traditionelle glutaminkilder producerer ammoniak under metabolismen, hvilket kan hæmme væksten. For at imødegå dette har forskere erstattet GlutaMAX med alternativer som α-ketoglutarat, glutamat og pyruvat. Disse forbindelser indgår i TCA-cyklussen eller glutaminolyseveje uden at generere ammoniak, hvilket understøtter vækst, mens dette biprodukt elimineres [2].
Strukturerede metoder som Design of Experiments (DOE) og Response Surface Methodology hjælper med at fjerne gætteriet fra medieoptimering.For eksempel optimerede en undersøgelse ved hjælp af et Box–Behnken-design fire faktorer - insulin, transferrin, selen og glukose - for CHO-celler. De ideelle koncentrationer blev bestemt som insulin ved 1,1 g/L, transferrin ved 0,545 g/L, selen ved 0,000724 g/L og glukose ved 1,4 g/L, hvilket opnåede en ønskværdighedsscore på 1,0 [3].
I et andet eksempel brugte Lin og kolleger intracellulær metabolomik til at screene 28 metabolitter for kyllingefibroblaster. Ved at anvende DOE opnåede de en 40,72% stigning i cellevækst sammenlignet med basislinjemedier [6].
Når proliferationsfasen er optimeret, er det næste skridt at justere mediet for at igangsætte differentiering.
Justeringer i Differentieringsfasen
Når cellerne når deres ønskede tæthed, skal mediekompositionen ændres for at fremme differentiering i stedet for proliferation. Denne fase kræver forskellige metaboliske signaler for at aktivere linjespecifikke veje, især for produktion af dyrket kød.
Interessant nok forbedrer de samme ikke-ammoniak-producerende forbindelser, der hjælper med proliferation, også differentiering. For eksempel opretholdt fibro-adipogene progenitorer, der blev dyrket i medier indeholdende pyruvat og α-ketoglutarat, deres evne til at differentiere og undgik ammoniakopbygning. Disse celler viste en 2,1 gange stigning i adipogen kapacitet sammenlignet med dem, der blev dyrket i GlutaMAX-baserede medier [2].
Transkriptomiske teknikker tilbyder en anden måde at skræddersy differentieringsmedier på. Messmer og kolleger identificerede overfladereceptorer, der er opreguleret under myogen differentiering under serum sult. Ved at teste ligander for disse receptorer skabte de et serumfrit medium specifikt designet til muskelcelleudvikling [6].
Konklusionen? Differentieringsmedier skal udformes til at levere de biologiske signaler, der naturligt driver linjeforpligtelse i den målrettede celletype.
Arts-Specifik og Celletype Tilpasning
Selv efter fase-specifik optimering skal medieformuleringer ofte finjusteres for hver art og celletype. Et universelt serumfrit medium findes simpelthen ikke. Ernæringsbehov kan variere betydeligt mellem kvæg-, svine- og fjerkræceller - og endda blandt celletyper fra samme art [6].
Nogle virksomheder har demonstreret, hvordan omhyggeligt valg af ingredienser kan opnå multi-arts kompatibilitet. For eksempel udviklede IntegriCulture Inc. og JT Group en fødevarekvalitetsformulering kaldet I-MEM2.0, som understøttede væksten af bovine skeletmuskelceller, andeleverceller og fem typer af primære kyllingeceller [6].
Metabolomics kan identificere de unikke metaboliske krav for specifikke celler. Kyllingefibroblaststudiet identificerede for eksempel vækstfremmende metabolitter, der var ansvarlige for forskelle i basalmedieydelse [6]. Tilsvarende testede en flertrinsmetode til at skabe dyrekomponentfrit medie forskellige supplementkombinationer for NIH 3T3-fibroblaster og tilpassede senere formlen til tre andre cellelinjer [5]. Mens kernekomponenter som insulin, transferrin og selen forbliver essentielle, varierer deres ideelle koncentrationer og den omgivende næringsmatrix ofte efter celletype.
Selv valget af basalmedium afspejler celletypebehov. DMEM/F-12 er et populært valg, fordi det kombinerer det høje næringsindhold i DMEM med de forskellige komponenter i Ham's F12, hvilket gør det velegnet til en bred vifte af adherente celler [2].På den anden side har Ham's F10 været effektiv i specifikke tilfælde, især når serum erstattes med definerede komponenter [2].
| Optimeringsmetode | Anvendelse | Hovedresultat |
|---|---|---|
| Metabolomics + DOE | Kyllingefibroblaster | 40.72% højere cellevækst med 28 optimerede metabolitter [6] |
| Transkriptomik | Myogen differentiering | Identificerede opregulerede receptorer til at formulere differentieringsmedium [6] |
| Komponentsubstitution | Multi-arts medium | Reducerede 31 komponenter til 16; understøttede bovine, and, og 5 kyllingecelletyper [6] |
| Plackett–Burman screening | HEK293 celler | Identificerede MgSO₄, EDTA og jerncitrat som nøglevækstfaktorer [4] |
Mineraler som jern, magnesium, calcium og zink spiller også en afgørende rolle i at optimere cellevækst og levedygtighed, med deres ideelle niveauer varierende efter celletype [4].For eksempel afslørede en Pareto-analyse af HEK293 cellekultur, at mens højere niveauer af magnesiumsulfat og EDTA hæmmer væksten, øgede ammoniumjern (III) citrat den betydeligt [4].
Hovedbudskabet? Tilpassede formuleringer til proliferations- og differentieringsfaserne, sammen med arts- og celletype-specifikke justeringer, er essentielle. Validering af disse formuleringer på tværs af målceller før opskalering af produktionen kan føre til bedre cellepræstation, kortere kulturtider og mere effektiv produktion af dyrket kød [6].
sbb-itb-ffee270
Omkostnings- og Bæredygtighedsovervejelser
Når det kommer til produktion af dyrket kød, er det essentielt at balancere omkostninger og bæredygtighed.En betydelig økonomisk udfordring ligger i formuleringen af vækstmediet, hvor farmaceutiske basalmediekomponenter - sammen med vækstfaktorer og rekombinante proteiner - øger omkostningerne. For at gøre dyrket kød mere kommercielt levedygtigt, skal strategier fokusere på at finde alternativer og minimere spild uden at gå på kompromis med celleydelsen.
Reducing Reliance on Expensive Components
En lovende tilgang til at reducere omkostningerne er at bytte farmaceutiske basalmediekomponenter ud med fødevarekvalitetsalternativer. Forskning viser, at denne substitution kan reducere basalmedieomkostningerne med 77% og de samlede omkostninger med 82% ved en produktionsskala på 1 kg [6]. Vigtigt er det, at denne omkostningsbesparende ændring ikke går på kompromis med kvaliteten. For eksempel demonstrerede IntegriCulture Inc. vellykket cellevækst for museskeletmuskel (C2C12) celler og primære celler afledt af bovin skeletmuskel ved brug af fødevarekvalitets DMEM [6].
IntegriCulture Inc. har yderligere strømlinet sin medieformulering ved at reducere antallet af komponenter fra 31 til 16 i sin fødevarekvalitets I-MEM2.0. Ved at erstatte flere aminosyrer med gær-ekstrakt skabte de en formulering, der understøtter væksten af bovine, and, og forskellige primære celletyper fra kylling [6].
Avancerede teknikker som intracellulær metabolomik spiller også en rolle i at identificere nøglemetabolitter, der fremmer vækst. For eksempel identificerede Lin og kolleger 28 metabolitter for kyllingefibroblaster og, ved hjælp af en Design of Experiments (DOE) tilgang, øgede cellevæksten med 40,72% [6]. Samlet set kan disse metoder reducere de samlede medieomkostninger med 50–80% [6].
Disse innovationer sænker ikke kun omkostningerne, men åbner også døren for mere bæredygtige indkøbsmuligheder.
Bæredygtig Indkøb og Affaldsreduktion
Omkostningseffektive medieformuleringer går hånd i hånd med miljømæssige fordele. Overgangen til serumfri og dyrekomponentfri formuleringer adresserer etiske bekymringer og mindsker forsyningskæderisici forbundet med føtalt bovint serum [5]. Derudover kan indkøb af fødevarekomponenter tilpasse sig cirkulære økonomiprincipper, såsom brug af landbrugsbiprodukter eller affaldsstrømme som medieingredienser, hvilket hjælper med at reducere miljøpåvirkningen.
En anden bæredygtighedsforanstaltning er at anvende genbrugsvenlige bioprocesseringssystemer, som genererer mindre affald sammenlignet med engangssystemer, og dermed reducerer det langsigtede miljøaftryk [1].
Indkøbsstrategier spiller også en kritisk rolle.Dyrkede kødproducenter kan henvende sig til platforme som
At sikre, at disse omkostningsbesparende foranstaltninger ikke kompromitterer celleydelsen, kræver robuste valideringsprotokoller. Omfattende vurderinger bør evaluere faktorer som cellelevedygtighed, proliferationshastigheder, metabolisk stabilitet og langvarig kulturkonsistens. Strenge kvalitetskontrolprocesser er afgørende for at opretholde pålidelighed og sikkerhed fra batch til batch [5].
| Omkostningsreduktionsstrategi | Indvirkning | Praktisk anvendelse |
|---|---|---|
| Fødevarekvalitets basalmediekomponenter | 77% reduktion i basalmedieomkostninger; 82% billigere ved 1 kg skala [6] | Erstat farmaceutisk kvalitet med fødevarekvalitetsalternativer, mens celleydelsen opretholdes [6] |
| Plantehydrolysater og gær-ekstrakt | Reduktion fra 31 til 16 mediekomponenter [6] | IntegriCulture Inc.'s I-MEM2.0 formulering understøtter bovine, and og forskellige kyllingecelletyper [6] |
| Metabolomics-guidet optimering | 40.72% stigning i cellevækst [6] | Identifikation og finjustering af 28 kandidatmetabolitter for kyllingefibroblaster via DOE [6] |
| Systematisk DOE-metodologi | 50–80% reduktion i de samlede medieomkostninger [6] | Kortere udviklingstidslinjer og reduceret materialespild gennem omfattende optimering [6] |
Selvom det kræver en indledende investering at skabe celletypespecifikke formuleringer, inkluderer udbyttet højere celleudbytter, færre kulturfejl og forbedret produktionseffektivitet - nøgletrin mod at gøre dyrket kød kommercielt levedygtigt.
Praktisk Implementering og Industriressourcer
At sikre ensartet ydeevne på tværs af produktionspartier, samtidig med at omkostningerne styres og kvaliteten opretholdes, er kritisk, når man arbejder med serumfrie medieformuleringer. Dette involverer grundig validering og etablering af pålidelige forsyningskanaler, som beskrevet nedenfor.
Validering og Kvalitetskontrol
Validering handler om præcision. Teknikker som transkriptomik og metabolomik kombineret med Design of Experiments (DOE) kan finjustere vækstfremmende metabolitter og validere differentieringsveje, hvilket fører til betydelige forbedringer i cellevækst. For eksempel brugte Messmer et al. transkriptomik til at identificere overfladereceptorer, der blev opreguleret under myogen differentiering forårsaget af serum sult. De testede derefter de relevante ligander for at skabe et serumfrit myogent differentieringsmedium [2].På samme måde optimerede Lin og kolleger 28 kandidatmetabolitter ved hjælp af intracellulær metabolomik og DOE, hvilket opnåede en 40,72% stigning i cellevækst sammenlignet med basisbetingelser [2].
For at opretholde kvaliteten er det essentielt at overvåge nøglemetrikker. Cellerne bør konsekvent vise levedygtighedsniveauer over 90% og nå de krævede tætheder, før de overgår til et 100% serumfrit medium [3].
Metabolisk overvågning er lige så vigtig. Ammoniak, et biprodukt af glutaminmetabolisme, kan alvorligt hæmme cellevækst [2]. Kvalitetskontrolprotokoller bør spore ammoniakniveauer og sikre, at alternative forbindelser, som ikke producerer ammoniak, stadig understøtter både proliferation og differentiering. For eksempel tillod erstatning af GlutaMAX med ikke-ammoniageniske forbindelser fibro-adipogene progenitorer at bevare deres differentieringsevne, mens de opnåede en 2.1-fold stigning i adipogen kapacitet [2].
DOE giver en struktureret statistisk tilgang til validering. Plackett-Burman-metoden, for eksempel, hjælper med at screene flere faktorer på to niveauer (høj/lav) for at identificere nøgleeffekter uden at kræve omfattende indledende tests [4]. Efter at have identificeret disse faktorer, kan mere detaljeret optimering udføres ved hjælp af Response Surface Methodology (RSM) med et Box-Behnken-design, som hjælper med at opnå maksimal produktionseffektivitet [3].
Konsistens mellem partier er ikke til forhandling. Mens serumfrie medier tilbyder kemisk definerede betingelser og reduceret variabilitet sammenlignet med serum-baserede alternativer [3], er streng kvalitetskontrol afgørende for fuldt ud at udnytte disse fordele.
Indkøb af komponenter gennem Cellbase
Når formuleringer er valideret, er det næste skridt at indkøbe pålidelige komponenter - en proces, der gøres enklere af platforme som
Platformen forenkler indkøb med funktioner som gennemsigtig prissætning og detaljeret brugssagstagging - uanset om du leder efter scaffold-kompatible, serumfrie eller GMP-kompatible komponenter. Dette gør det lettere for R&D-teams og indkøbsspecialister at finde præcis, hvad de har brug for, samtidig med at de balancerer omkostninger og bæredygtighed.
For virksomheder, der skalerer fra forskning til kommerciel produktion,
Udover sourcing tilbyder
Konklusion: Fremme af udvikling af serumfri medier
At skabe effektive serumfri medier til produktion af dyrket kød handler om at kombinere videnskabelig stringens med praktisk anvendelse. Moderne tilgange er afhængige af værktøjer som Design of Experiments (DOE) og Response Surface Methodology (RSM) for at finjustere flere variabler på én gang. Disse metoder har leveret imponerende resultater: forskere har rapporteret en 40,72% stigning i cellevækst ved at optimere 28 metabolitter i kyllingefibroblaster, mens andre opnåede 3,5 g/L rekombinant protein ved omhyggeligt at justere næringsstofkoncentrationer[2][3]. Disse gennembrud baner vejen for at forfine medieopskrifter og valideringsteknikker.
Udviklingsprocessen følger en konsekvent ramme.Det starter med at vælge et passende basismedium - DMEM/F-12 kombinationer er et almindeligt valg, da de giver en bred vifte af næringsstoffer, der kræves af de fleste celler. Vigtige tilsætningsstoffer som insulin, transferrin og selen tilsættes for at understøtte cellevækst. Derfra finjusteres næringsformuleringer baseret på de specifikke behov for celletype og art. For eksempel har det vist sig, at erstatning af traditionel glutamin med ikke-ammoniageniske alternativer øger adipogen kapacitet med 2,1 gange, samtidig med at ammoniakopbygning elimineres, hvilket kan hæmme vækst[2].
Præcision er kritisk under validering. Forskere sigter mod at opretholde cellelevedygtighed over 90%, overvåge ammoniakniveauer nøje og sikre konsistente resultater på tværs af flere cellepassager.Teknikker som Plackett-Burman metoden bruges til effektivt at screene en bred vifte af variable, mens Box-Behnken designs muliggør en dybdegående optimering af de vigtigste faktorer, når de først er identificeret[3][4].
Omkostninger er en anden vigtig overvejelse, især for kommerciel opskalering. Dyre komponenter skal optimeres for at finde den rette balance mellem ydeevne og overkommelighed. Fra november 2025 er dyrket kød kun godkendt til salg i tre lande[1], så formuleringer skal også opfylde strenge sikkerheds- og reguleringsstandarder for at muliggøre markedsudvidelse.
Til sourcing tilbyder platforme som
Ofte stillede spørgsmål
Hvad er fordelene ved at bruge serumfri medier i stedet for føtalt bovint serum i produktionen af dyrket kød?
Brugen af serumfri medier i produktionen af dyrket kød bringer flere vigtige fordele sammenlignet med føtalt bovint serum (FBS). For det første adresserer det etiske bekymringer knyttet til FBS, mens det undgår den uforudsigelige natur af dets forsyningskæde. Dette gør serumfri medier til et mere pålideligt og bæredygtigt valg.
En anden fordel er muligheden for at tilpasse serumfri formuleringer til at levere de præcise næringsstoffer, der er nødvendige for, at celler kan vokse, formere sig og differentiere sig effektivt. Denne skræddersyede tilgang hjælper med at opretholde konsistente resultater i produktionen.
Hvad mere er, at fjerne komponenter baseret på dyr reducerer risikoen for kontaminering betydeligt og sikrer en glattere regulatorisk godkendelse - begge er essentielle for at skalere produktionen af dyrket kød. Disse faktorer positionerer serumfri medier som et vigtigt skridt fremad i skabelsen af omkostningseffektive og skalerbare løsninger for den dyrkede kødindustri.
Hvilken rolle spiller vækstfaktorer som FGF2 og insulin i at fremme cellevækst og levedygtighed i serumfri medier?
Vækstfaktorer som FGF2 (fibroblast vækstfaktor 2) og insulin spiller en afgørende rolle i serumfri medier ved at understøtte essentielle cellulære aktiviteter. FGF2 driver celleproliferation ved at aktivere veje, der fremmer deling og vækst, hvilket gør det uundværligt for at opretholde sunde cellekulturer. I mellemtiden styrer insulin glukoseoptagelse og metabolisme, hvilket sikrer, at cellerne har den energi, de har brug for til at vokse og overleve.
Sammen skaber disse komponenter et miljø, der replikerer serumets understøttende funktioner, hvilket hjælper celler med at trives og differentiere effektivt under serumfrie betingelser. Dog skal deres koncentrationer justeres omhyggeligt for at passe til den specifikke celletype og den tilsigtede anvendelse for optimale resultater.
Hvordan kan serumfrit medie optimeres til forskellige arter og celletyper i produktionen af dyrket kød?
Optimering af serumfrit medie til produktion af dyrket kød betyder at finjustere dets næringsstofblanding for at passe til de unikke behov hos forskellige celletyper og arter. Dette indebærer omhyggelig justering af niveauerne af essentielle aminosyrer, vitaminer, og vækstfaktorer for at fremme cellevækst og udvikling.Lige så vigtigt er det at opretholde den rette balance af lipider, mineraler og kulhydrater for at sikre, at cellerne forbliver sunde og fungerer som tilsigtet.
Da hver art og celletype har sine egne metaboliske krav, er tilpasning ofte nødvendig. Værktøjer som high-throughput screening og metabolisk profilering er uvurderlige til at identificere de bedste formuleringer. Platforme som
